Genética y evolución

1. Genética y evolución ¿Cómo el N poblacional influye en la variabilidad genética?

2. ¿Qué es evolución ? Evolución evolutio Desenvolverse, pasar de un estado a otro

3. Evolución biológica • Es el proceso continuo de transformaciones de las especies a través de cambios producidos en sucesivas generaciones, que se ve reflejado en el cambio de las frecuencias alélicas de una población.

4. ¿Qué es variabilidad génica? • Variación del material genético. • Población, subpoblación o en grupos de individuos próximos.

5. variabilidad génica • Fuerzas evolutivas • Selección natural. • Flujo génico. • Deriva génica. • Procesos demográficos. • Sucesos históricos. Influenciada por

6. variabilidad génica • Habilidad para: • Responder a enfermedades • Responder a parásitos. • Responder a depredadores. • Responder a cambios ambientales

7. Recordando…. Cuello de botella Deriva génica Cambios al azar en frecuencias alélicas Reducciones drásticas en los tamaños efectivos y pueden repercutir en los niveles de variación genética

8. Cuello de botella

9. Deriva génica

10. El sistema de reproducción y el flujo génico son los mecanismos que permiten a las especies mantener una variación genética capaz de adaptarse a diferentes condiciones ambientales a lo largo del espacio y del tiempo.

11. Flujo génico paso de alelos de dos individuos de sexo contrario a su descendencia y más concretamente al zigoto u óvulo fecundado, por medio de células sexuales o gametas de ambos.

12. Aislamiento reproductivo imposibilidad de tener descendientes dos miembros de sexos contrarios pertenecientes a dos especies distintas.

15. ¿Cómo medir la variabilidad genética?

16. Técnicas para la evaluación de la variabilidad genética La existencia de variabilidad en el interior de las especies es un hecho fácilmente perceptible y es el requisito indispensable para que la especie evolucione y se adapte a nuevas condiciones. Dada la importancia de la variación, su cuantificación ha sido un objetivo perseguido por los genetistas de poblaciones.

17. VARIACIÓN ADAPTATIVA VARIABILIDAD GENÉTICA NEUTRAL Hay dos tipos de variabilidad genética:

18. Evaluación de la variación adaptativa Ensayos de procedencia/progenies, en los que se analiza el grado de variabilidad y el porcentaje de ésta que corresponde a una variación genética. Se ensayan distintos genotipos en un mismo ambiente con el fin de minimizar la variabilidad ambiental

19. Evaluación de la variación adaptativa • Usos • Mejoras de especies de importancia económica. • Caracteres con importancia productiva (crecimiento, resistencia a plagas, enfermedades, etc.). • Ensayos de procedencia. • Ensayos de progenie.

20. Evaluación de la variabilidad genética neutral A partir de las frecuencias con que aparecen cada una de las variantes (alelos) se calculan diversos parámetros que nos dan la medida de la diversidad neutral y permiten comparar entre especies y/o estudios.

21. Evaluación de la variabilidad genética Gracias a estos datos se puede…. • Establecer relaciones de paternidad y parentesco. • Relaciones filogenéticas • Analizar procesos en poblaciones(migración, cuellos de botella, deriva génica, etc.)

22. Evaluación de la variabilidad genética Los marcadores moleculares nos dan una estimación de la diversidad genética. • Marcadores proteicos • Marcadores de ADN

23. Evaluación de la variabilidad genética • Marcadores proteicos • Análisis isoenzimático • Electroforesis

24. Evaluación de la variabilidad genética • Marcadores de ADN • Técnicas basadas en PCR • RAPDs • Microsatélites nucleares y del cloroplasto. • ADN cloroplástico • ADN mitocondrial* ADN citoplasmático

25. Evaluación de la variabilidad genética Jiménez y Collada, 2000.

26. Evaluación de la variabilidad genética ¿Qué hicieron? Para ayudar a los programas de conservación de las tortugas del género Testudo, en peligro de extinción y acceder a un mejor conocimiento de su sistemática, fue investigada la variación genética y la evolución de las especies de tortugas de dicho géneromediante el análisis de secuencias de fragmentos de 394 nucleótidos del gen mitocondrial 12S ARNr (n=158). Ejemplares: Testudo graeca graeca, Testudo graeca ibera, Testudo graeca terrestris y una subespecie recientemente reconocida Testudo graeca whitei.

27. C van der Kuyl et al., 2005.

28. Evaluación de la variabilidad genética Resultados La red de haplotipos generados sugirió la existencia de dos clados principales de Testudo graeca, comprendiendo Testudo graeca desde el norte de África y Testudo graeca de Turquía y de Medio Oriente, respectivamente. Conclusión Los haplotipos de ADN mitocondrial sugieren que las tortugas de las subespecies T. g. graeca y T. g. ibera son genéticamente distintos, con un tiempo de divergencia calculada a principios o mediados Pleistoceno.

29. Evaluación de la variabilidad genética ¿Qué hicieron? Analizaron la variabilidad genética del genoma mt de la raza ovina Xisqueta (en peligro de extinción). Para ello se tomaron 71 individuos de 13 subpoblaciones, distribuidas en difernetes comarcas. Resultados A pesar del reducido N, Xisqueta, conserva altos niveles de variabilidad genética.

30. CONCLUSIÓN Los estudios para la variabilidad genética han constituido una herramienta no sólo a nivel académico sino también de aplicación práctica en el campo de la conservación, gracias al uso de marcadores moleculares. Los cuales permiten: • Medir la diversidad genética, • estimar las tasas de flujo genético o migración, • estudios de filogenia y taxonomía, • mapas de ligamiento genético, etc. Hay que señalar la necesidad de integrar toda la información genética de que se disponga con la ecológica, selvícola y socioecológica, para obtener una visión de los verdaderos riesgos de desaparición o declive de la especie considerada.

31. Ejemplo de cuello de botella Elefante marino (Mirounga )

32. Elefante marino (Mirounga ) Elefante marino del Sur Mirounga leonina Elefante marino del Norte Miroungaangustirostris

33. Un poco de biología…. Elefante marino del norte (Miroungaangustirostris ) • Reproduccion

34. ¿Cómo se llego al cuello de botella? • Caza sin control en el S. XIX.

35. ¿Cuando empezó el cuello de botella? 1884 100 indv 76 años 1960 15.000 indv

36. Qué estudios se hicieron • Bonnell & Selander (1974) -Homogenidad genética en Aloenzimas de elefantes marinos del Norte. -Heterogenidad genética en Aloenzimas de elefantes marinos del Sur. • Hoelzel et al. (1993) - Los mismos resultados

37. Y más estudios…. ADN mitocondrial (300pb)

38. Resultados • Confirmación de falta de variabilidad genética del elefante marino del Norte respecto al Sur. • La especie fue cazada casi hasta su extinción (20%). • Concuerda con un cuello de botella extremo.

39. Recuperados??? • Hoy en día más de 100.000 individuos, la diversidad genética global está reducida. • Se cree que puede tener vulnerabilidad a agentes infecciosos . • Se cree problemas en la reproducción.

40. Conclusiones Población grande Mucha variabilidad

41. Conclusiones Población grande Poca variabilidad

42. Gaviotas: N aumenta debido a Flujo génico

43. *Larushyperboreus*Larusargentatus

45. *estudio de variación en 5 loci de microsatélites*variación de secuencia de ADN mitocondrial*estudio de haplotiposcuando mas de un haplotipo se encuentra en una especie y el haplotipo menos frecuente es idéntico al haplotipocomun en otras especiesTRANSFERENCIA DE FLUJO GÉNICO Para comprobar flujo génico

47. (Vigfúsdóttir, 2008)

48. Tres subtipos de haplotipos principales(Vigfusdottir, 2008)De los 26 haplotipos en los grupos I y II, 4 son compatibles entre L.hyperboreus yL.argentatusen el grupo IIEstos 4 se encuentran en ambas especies en Islandia, pero A12 se encuentra en L.hyperboreus en otros paises europeos

49. Debido al N:Mayor diversidad de haplotipos en Larusargentatusen comparación con Larushyperboreus

50. Números de aleleos similares para ambas especiesloci variables H625 y H618loci menos variable H616