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Cinética Microbiana

Cinética Microbiana. Reproducción bacteriana. Fisión binaria Una célula se divide en dos después de desarrollar una pared transversa. Generalmente es asexual aunque en algunas especies puede ser precedida de conjugación. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa. Fisión Binaria. Keiko Shirai:

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Cinética Microbiana

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Presentation Transcript

  1. Cinética Microbiana

  2. Reproducción bacteriana • Fisión binaria Una célula se divide en dos después de desarrollar una pared transversa. Generalmente es asexual aunque en algunas especies puede ser precedida de conjugación. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  3. Fisión Binaria Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  4. Conjugación Bacteriana • La transferencia de material genético de una célula a otra requiere contacto real. Se realiza mediante la unión a través de una fimbria sexual (“F”). Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  5. Las células masculinas F contienen una pieza circular de ADN llamada factor fertilidad o F. Las células femeninas F- carecen de este facto y son receptoras durante la conjugación. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  6. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  7. Otras formas de reproducción bacteriana: • Esporas • Fragmentación • Gemación Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  8. Reproducción de levaduras: Saccharomyces cerevisiae (levadura del pan) se pueden observar algunas células gemando. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa Tomada de:Lim, D. 1998. Microbiology. Mc Graw-Hill. Estados Unidos

  9. Germinación de esporas de hongos Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  10. Crecimiento Apical: Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  11. Crecimiento Apical: Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  12. Crecimiento • Se define como un incremento ordenado de los principales constituyentes de un organismo. • Involucra síntesis de estructuras celulares, ácidos nucleicos, proteínas y otros componentes celulares a partir de nutrientes. • Todos los seres vivos toman nutrientes y excretan productos de desecho. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  13. Fases de crecimiento. • Fase lag Es un período de adaptación, cuando un cultivo de m.o. es llevado de un ambiente a otro. Los m.o. sufren una reorganización tanto en su velocidad de crecimiento como en sus constituyentes macromoleculares. Durante esta etapa la masa celular puede cambiar sin cambiar el número de células. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  14. Fases de crecimiento. • Fase log ó exponencial Es un período de balance o de estado estacionario en el crecimiento, durante el cual la velocidad específica de crecimiento es constante. La composición química del medio de cultivo esta cambiando debido a que los nutrientes se están consumiendo y productos metabólicos son producidos. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  15. Fases de crecimiento. • Fase estacionaria Los nutrientes se agotan y productos tóxicos se acumulan, crecimiento es más despacio con un número de células constante. La masa total puede permanecer constante pero el número de células puede descender. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  16. Fases de crecimiento. • Fase de decaimiento o muerte Un gran número de células muere. Los nutrientes se agotan y productos tóxicos se acumulan. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  17. Crecimiento... • Bajo condiciones exponenciales se describe: dX/dt=mX….. (1) dN/dt=mn N….. (2) donde: X Concentración de m.o. en g/l N Concentración de m.o. en células/l t Tiempo m Velocidad específica de crecimiento en h-1 (masa) mnVelocidad específica de crecimiento en h-1 (número) Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  18. Crecimiento... • dX/x=mdt • Xt=X0emt….(3) Xt es la concentración de m.o. en g/l en tiempo (t) X0 es la concentración inicial de m.o. en g/l e es la base de logaritmo natural Si la velocidad específica de crecimiento es constante • lnXt=lnX0+mt ….. (4) La ec. 4 puede ser resuelta para el caso en el cual Dt=td, el tiempo requerido para X2=2X1 • td=ln2/m=0.693/m....(5) Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  19. La velocidad específica de crecimiento es obtenida a partir de la pendiente de una gráfica de lnX vs tiempo Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  20. Tiempo de generación o duplicación • Las bacterias generalmente se reproducen por fisión binaria. • En este proceso una célula crece progresivamente para posteriormente dividirse en dos células iguales. • El tiempo requerido para que la célula se divide (o para que la población de un organismo se duplique en número) se conoce como tiempo de generación o duplicación. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  21. Ejemplo de crecimiento exponencial Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  22. Número de generaciones • N0=número inicial de la población • Nt=número final de la población en un tiempo t • n=número de generaciones en un tiempo t • Nt= N02n • logNt=logN0+ nlog2 • n=(logNt- logN0)/log2 • n=(logNt- logN0)/0.301 Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  23. Constante de velocidad media del crecimiento (k) • k es el número de generaciones por unidad de tiempo (generaciones por hora) • k=n/t=(logNt- logN0)/0.301t • Si n=1, tiempo medio de generación o duplicación(g) • Nt= 2N0 • k= (log 2N0 -logN0 )/0.301g • k=1/g • g=1/k Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  24. Descripción del crecimiento en hongos filamentosos Xt es la concentración de m.o. en g/l en tiempo (t) X0 es la concentración inicial de m.o. en g/l Xmaxes la concentración máxima de m.o. en g/l (t) m Velocidad específica de crecimiento en h-1 (masa)

  25. Ejemplo de cinética de crecimiento con diferentes concentraciones de sustrato (glucosa) de Aspergillus niger Larralde-Corona et al., (1997)

  26. Ecuación de Monod Describe la velocidad de crecimiento en relación a la concentración de nutrientes. m =mmax [S/Ks+S] donde: m Velocidad específica de crecimiento mmax Velocidad máxima específica de crecimiento S Concentración de sustrato Ks Constante de afinidad del m.o. al sustrato Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  27. Velocidad específica de crecimiento mmax 0.5mmax Ks Concentración de Sustrato Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  28. Rendimiento celular Expresa la masa celular obtenida o cantidad de producto por unidad de masa o sustrato consumido Yx/s = DX/DS, Yp/s= DP/DS, Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  29. Existen diferentes métodos para medir crecimiento: • Conteo directo al microscopio • Método del número más probable • Dilución en placa • Turbidimetria • Peso seco • Actividad celular Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  30. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  31. Determinación de cantidades usando cámaras de conteo • Se puede necesitar contar el número de organismos en un volumen dado de líquido. • Este tipo de conteo está asociado con pruebas bacteriológicas o médicas. • Existen varias cámaras diseñadas para contar precisamente células u organismos en condiciones diversas.

  32. Hemocitómetro o Cámara cuenta glóbulos Este sistema tiene 2 áreas de conteo separadas, cada una debe contener de 0.1 mm3 de muestra cuando se cubre con un cubre objetos especial. Áreas de conteo

  33. Cubre objetos especial • Un cubreobjetos especial, grueso se monta sobre dos barras de cristal y esto forma las dos cámaras. Bar Bar

  34. Líneas finas en le piso de la cámara ayudan con el conteo celular. Cuadrículas de conteo El # células por ml = Promedio del # de células de los cuadros de las esquinas x 104.

  35. La transferencia de la suspensión celular se hace por capilaridad Llene la cámara con la suspensión celular utilizando una pipeta con punta fina aplicándola sobre el área escavada de la cámara Deje la suspensión entrar por capilaridad No ejercer presión durante el llenado con presión

  36. Cámara cuenta hongos de Howard • Fue diseñada especialmente para contar hongos y levaduras en un volumen dado de alimento. • La estructura es similar a la des hemocitómetro pero no tiene cuadrícula en el piso de la cámara. • Un disco ocular de Howard en el ocular del microscopio se usa para facilitar el conteo.

  37. Cámara cuenta hongos de Howard

  38. Cámara de conteo de Sedgewick-Rafter Consiste de un marco de bronce o poliestireno rectangular pegado a un portaobjetos y cubierto con otro. Esto crea una cámara de conteo de 1 ml. Esta cámara es usada en laboratorios de limnología para contar plancton en 1 ml de muestra de agua.

  39. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  40. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

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  43. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  44. Tiempo de generación o duplicación • Tdpromedio en bacterias: 15-20’ o bien de 45-60’. • Tdpromedio en levaduras: 90-120’. • Tdpromedio en hongos: 60-90’ o bien de 4-8 horas. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  45. Crecimiento críptico Se puede observar durante la fase estacionaria, en la que se produce un medio complejo debido a lisis celular a partir de la cual los m.o. pueden crecer como en etapa exponencial. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  46. Crecimiento sincronizado Son poblaciones de células que están en la misma etapa de crecimiento. Se pierde la sincronía debido a que las diferentes poblaciones no envejecen igual. El crecimiento sincronizado puede ser obtenido mediante la alteración del ambiente (temperatura,o nutrientes). Por ejemplo: Baja temperatura a que los m.o. aumentan su talla pero no hay división, para después incrementar temperatura a la optima. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

  47. Un quimostato permite mantener la población microbiana constante. Consiste de un reservorio con medio estéril un regulador de flujo que controla la adición de medio fresco al cultivo. El reservorio del cultivo a su vez tiene paso a otro recipiente que colecta el medio agotado. Keiko Shirai: UAM-Iztapalapa

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