1 / 38

Biochemie v letním semestru - MODUL A -

Biochemie v letním semestru - MODUL A -. Zápočet 4 praktika (A1 – A4) 3 ústní přezkoušení: Dýchání, Krev a tělní tekutiny Urogenitální systém, Acidobazická rovnováha Trávení a vstřebávání, Intermediární metabolismus. Laboratorní metody - letní semestr -. Vladimíra Kvasnicová.

fadey
Download Presentation

Biochemie v letním semestru - MODUL A -

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. Biochemie v letním semestru- MODUL A - Zápočet • 4 praktika (A1 – A4) • 3 ústní přezkoušení: • Dýchání, Krev a tělní tekutiny • Urogenitální systém, Acidobazická rovnováha • Trávení a vstřebávání, Intermediární metabolismus

  2. Laboratorní metody- letní semestr - Vladimíra Kvasnicová

  3. Preanalytická fáze = příprava a zpracování vzorků před vlastní laboratorní analýzou • náběr krve • sérum x plazma • každý biologický materiál je potenciálně infekční ! • ukázka zpracování vzorků krve v biochemické laboratoři - video

  4. Centrifugace = metoda používaná k oddělení pevných složek směsi od přítomné kapalné fáze na základě jejich velikosti, tvaru a hustoty, viskozity média a rychlosti rotoru odstředivá síla:P = m x r x2 m – hmotnost částice r - poloměr centrifugy  - úhlová rychlost

  5. Centrifugace • fixní úhel rotoru nebo horizontální • centrifuga musí být vyvážená Obrázek převzat zhttp://www.all-science-fair-projects.com/science_fair_projects_encyclopedia/Centrifuge a http://www.flickr.com/photos/gonzales2010/9624402/ (únor 2008)

  6. Centrifugace Obrázek převzat zhttp://www.flickr.com/photos/businesscheese/1803417133/ (únor 2008)

  7. Centrifugace • rychlost: počet otáček za minutu(RPM = revolutions per minute) ! Nastavením stejné hodnoty RPM v centrifugácho různém poloměru nedosáhneme stejné odstředivé síly ! • odstředivá síla:relativní odstředivé zrychlení(RCF=relative centrifugal force) • RCF = 1.12 x 10-5x r x (rpm)2 • r = poloměr centrifugy (cm) • jednotky: gRCF udává kolikrát je zrychlení centrifugy větší než je normální tíhové zrychlení g = 9.81 m x s-2

  8. Centrifugace a) běžné laboratorní centrifugy (až 10 000 G) b) vysokorychlostní chlazené centrifugy (až 50 000 G) c) ultracentrifugy /chlazené + vakuum/ (až 500 000 G) příklad: k oddělení séra ze sražené krve stačí centrifugace 10 min. při RCF = 1000 g

  9. Obrázek převzat zhttp://www.chem.arizona.edu/tpp/chemt/CAn/Graphics/centrifuge/blood%20centrifugation.png a http://www.academic.marist.edu/~jzmz/HematologyI/Intro3.html (únor 2008)

  10. Obrázek převzat zhttp://science.tjc.edu/Course/BIOLOGY/bott/anatomy/2402/summer%202402%20%20blood%20notes/c18_02.jpg a http://faculty.washington.edu/kepeter/119/images/hematocrit_tube_trio.jpg(únor 2008)

  11. A) Preparativní centrifugace • slouží k separaci částic od kapalné fáze • získáme 2 frakce: • sediment(pelleta, pevná fáze) • supernatant(kapalná fáze) Obrázek převzat zhttp://www.steve.gb.com/science/molecular_biology_methods.html (únor 2008)

  12. frakční centrifugace(= diferenciální centrifugace) • zvláštní typ preparativní centrifugace • používá se k separaci buněčných organel, které se liší velikostí a hustotou • při použití nízkého RCF sedimentují jen částices velkou hustotou → vytvořený supernatant se přelije do jiné zkumavky a centrifuguje při vyšší hodnotě RCF opakováním postupu získáme frakce různých buněčných organel

  13. Frakční centrifugace Obrázek převzat zhttp://fig.cox.miami.edu/~cmallery/150/protein/c7x3fractionation.jpg (únor 2008)

  14. B) Analytická centrifugace • používá se k měření fyzikálních vlastností sedimentujících částic(sedimentační koeficient, molekulová hmotnost) • používají se ultracentrifugy • centrifugované částice jsou během centrifugace sledovány optickým systémem(měření absorbance či zákalu) a průběh procesu je zobrazován pomocí PC

  15. Elektroforéza(ELFO) = analytická metoda založená na pohybu nabitých částic vlivem vnějšího elektrického pole (stejnosměrný proud) • rychlost elektromigrace závisí na: a) velikosti, tvaru a náboji částice b) vloženém napětí

  16. Elektroforéza • anion – negativně nabitý ion, pohybuje se směrem k anodě (+) • kation – pozitivně nabitý ion, pohybuje se směrem ke katodě (-) • amfolyt – látka, která může mít pozitivní, negativní či nulový celkový náboj, a tov závislosti na vnějších podmínkách (pH)např. proteiny

  17. Klasifikace elektroforetických technik • volná elektroforéza • separace probíhá pouze v kapalné fázi(v pufru), tj. bez účasti nosného média (kapilární elektroforéza) • elektroforéza na nosičích • papír, gel (agaróza, polyakrylamid) • horizontální nebo vertikální uspořádání

  18. Kapilární elektroforéza Obrázek převzat zhttp://www.hood.edu/images/content/academics/instruments/Agilent_Capillary_Electrophoresis_System.JPG(únor 2008)

  19. Kapilární elektroforéza Obrázek převzat zhttp://en.wikipedia.org/wiki/Capillary_electrophoresis (únor 2008)

  20. Gelová elektroforéza- horizontální uspořádání Obrázek převzat zhttp://www.mun.ca/biology/desmid/brian/BIOL2250/Week_Three/electro4.jpg (únor 2008)

  21. Gelová elektroforéza – vertikální uspořádání SDS-PAGE – animace Obrázek převzat zhttp://fig.cox.miami.edu/~cmallery/150/protein/page.jpg (únor 2008)

  22. Parametry ovlivňující elektroforetickou separaci • pH mění náboj analytu (disociace) a tím i jeho pohyblivost; může měnit i strukturu analytu (denaturace) • iontová síla mění napětí či proud: zvýšení iontové síly obvykle sníží migrační rychlost a způsobí zahřívání systému • teplota: vysoká teplota může denaturovat (vysrážet) proteiny; nízká teplota snižuje difuzi, ale také migrační rychlost, nemá vliv na rozlišení • proud: příliš vysoký proud způsobí přehřátí systému • napětí: migrační rychlost je přímo úměrná napětí • čas: rozlišení (vzájemné oddělení proužků) roste lineárněs časem, ale rozmytí proužků (difuze) roste se čtvercem času • nosné médium: velikost pórů nosiče a endoosmóza ovlivňují migrační rychlost (výběr typu nosiče)

  23. Průběh elektroforézy • aplikace vzorku • nastavení vhodného napětí nebo proudu! STEJNOSMĚRNÝ PROUD !(gelová elektroforéza: kolem 70 - 100 V,kapilární elektroforéza: kolem 20 000 V) • nastavení doby separace: řádově minuty(př. gelová elfo proteinů séra trvá asi 30 min.) • při elfo na nosičích následuje po separacifixace a barvení • vyhodnocení: • kvalitativní (srovnání se standardy) • kvantitativní (na nosičích: densitometricky)

  24. Vybavení pro gelovou elektroforézu používanou v praktiku A1 zdroj stejnosměrného proudu nádobky na barvení a odbarvování gelu elektroforetická komora aplikátor

  25. Elektroforéza– příklady klinického využití - • separaceproteinů séra, izoenzymů,nukleových kyselin • imunoelektroforéza (imunoglobuliny) Obrázek převzat z http://www.sebia-usa.com/images/controlGel1.jpg (únor 2008)

  26. Elektroforéza– příklady klinického využití - • separaceproteinů séra, izoenzymů,nukleových kyselin • imunoelektroforéza (imunoglobuliny) Obrázek převzat z http://www.sebia.com/V2/php/index.php?tpc=1&nv=0,2&page=contenu&id_prod=39#(únor 2008)

  27. Využití elektroforézy proteinůk diagnostice nemocí • rozdělení proteinů do frakcí je za fyziologických podmínekkonstantní(poloha, intenzita) • zastoupení proteinů v plazmě se při různých onemocněníchmění(vzájemný poměr) specifický vzhled elektroferogramu(rozložení frakcí nebo píků)

  28. Hlavní proteiny jednotlivých frakcí imunoglobuliny: IgG, IgA, IgM 2-makroglobulin haptoglobin 1-antitrypsin orozomukoid transferin C3-komplement

  29. Výsledek ELFO proteinů sérana agarózovém gelu – 6 frakcí hypergama- globulinémie normální nález Obrázek převzat z http://www.sebia-usa.com/products/proteinControl.html (únor 2007)

  30. Výsledek ELFO proteinů sérana agarózovém gelu – 5 frakcí • fyziologický nález • akutní onemocnění • výskyt paraproteinu • frakce fibrinogenu při analýze plazmy

  31. Denzitometrický záznam elektroforézy 60% 3% 9% 12% 16% Obrázky převzaty z http://www.sebia-usa.com/products/hyrys2.htmla z http://erl.pathology.iupui.edu/LABMED/GENER27.HTM(únor 2007)

  32. Obrázek je převzat z učebnice: Devlin, T. M. (editor): Textbook of Biochemistry with Clinical Correlations, 4th ed. Wiley‑Liss, Inc., New York, 1997. ISBN 0‑471‑15451‑2

  33. Obrázek je převzat z učebnice: Devlin, T. M. (editor): Textbook of Biochemistry with Clinical Correlations, 4th ed. Wiley‑Liss, Inc., New York, 1997. ISBN 0‑471‑15451‑2

  34. Obrázek převzat z http://www.sebia-usa.com/products/reagents.html (únor 2007)

  35. Obrázek převzat z http://www.sebia-usa.com/products/reagents.html (únor 2007)

  36. IMUNOFIXACE- určování typu paraproteinu (monoklonálního Ig) Obrázek převzat z http://www.sebia-usa.com/products/reagents.html (únor 2007)

  37. Detekované paraproteiny(monoklonální protilátky /myelom ) Obrázek převzat z http://users.rcn.com/jkimball.ma.ultranet/BiologyPages/B/Blood.html#lipids(duben 2007)

More Related