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EVALUACIÓN DE LA HEMOSTASIA

EVALUACIÓN DE LA HEMOSTASIA. RECUENTO DE PLAQUETAS. METODOS. Manual Automatizado. RECUENTO MANUAL DE PLAQUETAS. RECUENTO MANUAL DE PLAQUETAS. Método de referencia. Contraste de fase. Muy adherentes. Pequeñas. PROCEDIMIENTO. Dilución 1:100. Dejar 15’ en cámara húmeda. Objetivo de 40x.

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EVALUACIÓN DE LA HEMOSTASIA

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Presentation Transcript


  1. EVALUACIÓN DE LA HEMOSTASIA

  2. RECUENTO DE PLAQUETAS

  3. METODOS • Manual • Automatizado

  4. RECUENTO MANUAL DE PLAQUETAS

  5. RECUENTO MANUAL DE PLAQUETAS • Método de referencia. • Contraste de fase. • Muy adherentes. • Pequeñas.

  6. PROCEDIMIENTO • Dilución 1:100. • Dejar 15’ en cámara húmeda. • Objetivo de 40x. • Contar cuadro del centro: 1mm2. • Se deben contar ambos lados de la cámara • Cálculo no x 10 x 100. • Verificación con el F.S.P.

  7. ERRORES • Mezcla inadecuada • Muestra defectuosa. • Suciedad de instrumentos. • Recuentos de plaquetas bajos: menor dilución. • Recuentos de plaquetas altos: mayor dilución. • Satelitosis plaquetaria. • Citrato dilución 1.1

  8. SATELITOSIS PLAQUETARIA

  9. EXÁMEN MICROSCÓPICO • Aumento de 10X. • Aumento de 40X. • Aumento de 100X.

  10. RECUENTO PLAQUETARIO EN EL F.S.P. • Objetivo de inmersión. • 10 campos. • Promedio de plaquetas x 20000. • Anemia o eritrocitosis. • NO de plaquetas X RTO de eritrocitos 200

  11. RECUENTO PLAQUETARIO AUTOMATIZADO • Exactitud • Precisión • Volumen mínimo. • Diagnóstico y tto oportuno

  12. FUNCION PLAQUETARIA Pruebas • Recuento de plaquetas. • Revisión del extendido de sangre.

  13. CUANDO SE DEBEN REALIZAR • Síntomas hemorrágicos • Petequias, epistaxis con recuento de plaquetas normales

  14. ¿PORQUE SE DEBEN REALIZAR? • Trastornos hereditarios – raros • Trastornos adquiridos – comunes

  15. TRASTORNOS ADQUIRIDOS • Enfermedad hepática, renal • Síndromes mieloproliferativos • Síndromes mielodisplásicos. • Mieloma múltiple. • Uremia. • Autoinmunidad. • Anemia. • Tratamiento con fármacos

  16. MORFOLOGIA PLAQUETARIA • Plaquetas grandes grises. • Intercambio plaquetario rápido. • Plaquetas gigantes o con forma bizarra.

  17. TIEMPO DE SANGRIA • Diagnostica trastornos de sangrado. • Evalúa la adhesión y agregación. • Se prolonga en enfermedades vasculares.

  18. TIEMPO DE SANGRIA Tiempo que tarda en detenerse la hemorragia de un corte estándar en profundidad y longitud en la piel. • DUKE (1912) • IVY (1941)

  19. TIEMPO DE SANGRIA(Lóbulo de la oreja) • Presión intracapilar. • Espesor cutáneo. • Tamaño y profundidad de la herida

  20. TIEMPO DE SANGRIA ESTANDARIZADO

  21. TIEMPO DE SANGRIA RESULTADOS/INTERPRETACION • Normal hasta 8 minutos. • Un resultado anormal debe ser repetido. • Al continuar la hemorragia mas de 10’ informar mayor de 10’. Suspender la prueba • Advertir la formación de cicratiz

  22. TIEMPO DE SANGRIA PROLONGADO • Trombocitopenia. • Enfermedad de von Willebrand. • Trombastenia de Glanzman. • Síndrome de Bernard Soulier. • Enfermedad de almacenaje.

  23. TIEMPO DE SANGRIA PROLONGADO • Esenciales el fibrinogeno y el FV. • Dificultades de ellos T.S.P. • Fármacos que contienen aspirina

  24. RETRACCION DEL COAGULO Da información sobre el numero y la función plaquetaria. Cuando el coagulo se retrae, el suero es liberado y se puede medir el grado de retracción del coagulo

  25. RESULTADOS/ INTERPRETACION Valor de 40 – 65% Valores anormales en: • Trombastenia de Glanzmann. • Trombocitopenia. • Disfibrinogenemia. • Hipofibrinogenemia.

  26. PRUEBAS PARA EVALUAR HEMOSTASIA SECUNDARIA

  27. MUESTRA • Sangre total venosa. • Aguja máximo calibre 21. • Jeringa o tubo al vacío. • Plástico o recubierto con silicona. • Evitar el uso del torniquete.

  28. INFORMACION EN CADA TUBO DE MUESTRA • Nombre completo del paciente. • Número de identificación del paciente. • Fecha de recolección. • Hora de recolección (exacta). • Iniciales o código de recolección.

  29. ORDEN DE EXTRACCIÓN (NCCLS-1988) • Hemocultivo • Tubo sin aditivos (tapón rojo) • Tubo para coagulación (tapón celeste). • Otros tubos con aditivos: • Tubo con gel o separador de suero (tapón dorado). • Tubo con heparina (tapón verde). • Tubo con edta (tapón lavanda). • Tubo con oxalato de potasio o floruro de sodio (tapón gris).

  30. TUBOS PARA LA RECOLECCION • Tubos estériles con tapón azul. • Citrato de sodio 0,105-0,109 m (3.2%). • Relación sangre entera a anticoagulan- te: 9:1 • El citrato evita la coagulación al unirse con el calcio. • Relación citrato en sangre entera: 10,5-10,9 mmol/L

  31. NUEVAS MUESTRAS

  32. CORRECCIÓN DEL VOLUMEN DE CITRATO • En eritrocitosis, disminuye el volumen plasmático con respecto a la sangre entera elevándose la relación anticoagulante – plasma prolongándose falsamente los tiempos. C= (1.85x10-3).(100-H)V • C= Vol citrato en mL. • V=Vol sangre entera/solución de citrato en mL • H=Hematocrito.

  33. TANSPORTE Y TO ALMACENAMIENTO • Mantenerlas tapadas y en posición vertical • Entre 18° - 24°c o a 2-4°C transporte • Conservación a menos de 4°C.

  34. PLASMA DEFICIENTE EN PLAQUETAS - PDP • Plasma con recuento de plaquetas menor a 10x103 /uL. • Centrifugar a 1500g durante 15’ tapados.

  35. CONSERVACIÓN POR PERIODOS PROLONGADOS • Transferir el PDP con pipeta plástica a un tubo seco, tapado. • Congelar a -20°C/2 semanas o -70°C /6 meses. • Descongelar a 37°C rápidamente. • Procesar durante la hora siguiente. • No recongelar. • Hasta 2h después del descongelamiento entre 2-4°.

  36. REACTIVOS • Lábiles. • Reconstituir según instrucciones del fabricante. • Atemperar 30’ a T° ambiente. • Agregar el agua, mezclar por rotación 45’’. • Dejar en reposo 30’. • Utilizar en las mediciones y llevar a refrigeración.

  37. PREPARACIÓN DEL POOL NORMAL

  38. DETECCIÓN SISTEMÁTICA DE PROCOAGULANTES PLASMATICOS BASADA EN EL COÁGULO • Tiempo de coagulación de LEE-WHITE, 1913. • Primer procedimiento in vitro. • El intervalo desde la iniciación de la coagulación hasta la formación del coágulo visible.

  39. TIEMPO DE PROTROMBINA (PT) • TROMBOPLASTINA: FACTOR TISULAR RECOMBINANTE SUSPENDIDO EN FOSFOLÍPIDOS MEZCLADOS CON UNA SOLUCIÓN DE CLORURO DE Ca 0,025M AMORTIGUADA. • Refleja la eficacia global de la vía extrínseca. • Es sensible a cambios en los factores V, VII y X. • Poco apropiada para detectar pequeños cambios en los niveles de fib. • Para controlar la anticoagulación por vía oral.

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