1 / 26

Problémy spojené s kultivací in vitro

Problémy spojené s kultivací in vitro. rekalcitrance. Nežádoucí a většinou ireverzibilní stav nastávající u kultur in vitro, kdy buňky, pletiva nebo orgány ustrnou ve vývoji i růstu a ač jsou živé, nereagují ani na

mary
Download Presentation

Problémy spojené s kultivací in vitro

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. Problémy spojené s kultivací in vitro

  2. rekalcitrance Nežádoucí a většinou ireverzibilní stav nastávající u kultur in vitro, kdy buňky, pletiva nebo orgány ustrnou ve vývoji i růstu a ač jsou živé, nereagují ani na • změněné kultivační podmínky (recalcitro = přístup odpírám, vyhazuji – o koni).

  3. Rekalcitrantní genotypy Příčiny • jsou spatřovány v ekologické konstituci rostlinného materiálu (donora), manipulacích invitro a stresorech in vitro.Vážný problém v biotechnologii. Hypotéza: neexistují (jen zatím nevíme jak na to)

  4. Symptomy in vitro 1. Atypická anatomie, morfologie a fyziologie - miniaturizace • změna stavby listů a jejich funkce (uzavřený prostor), pokožka s nízkým obsahem pektinu a celulózy, s nedostatečně vyvinutou kutikulou Nefunkční průduchy • opuchlé výhony • listy bledě zelené nebo šedomodré • listy podlouhlé nebo páskovité • křehké • krabacené nebo zkroucené

  5. listy průsvitného (skelného) vzhledu - vitrifikace • Sklovitý až průhledný vzhled • Hyperhydricita pletiv a orgánů • křehkost

  6. http://www.hort.purdue.edu/hort/courses/HORT201/Lec/03-05-08TCProblems.pdfhttp://www.hort.purdue.edu/hort/courses/HORT201/Lec/03-05-08TCProblems.pdf

  7. Grigoriadou1, 2007

  8. Etylén • Oxid uhličitý • Vodní páry • Komponenty média (cytokininy, sacharóza, dusík) • Vysoká teplota

  9. Jak překonat? • Zvýšit koncentraci agaru, případně změnit na Gelrit (event. šikmý agar) • Změnit poměr amonia: nitrátu • Snížit hladinu cytokininů na minimum • ventilovat

  10. Srovnání atmosféry Skleník in vitro kultura • O2 21 % jen 4 % • CO2 0.04 % až 20 % • H2O 60-85 % 100 %

  11. Jak překonat? • Zvýšit koncentraci agaru, případně změnit na Gelrit (event. šikmý agar) • Změnit poměr amonia: nitrátu • Snížit hladinu cytokininů na minimum • Ventilovat • Zvýšit intenzitu světla (fotosyntézu) • Snížit teplotu a vlhkost

  12. 2. Redukce apikální dominance • Zkrácená internodia výhonků • Růžicovitý růst • shluky výhonů při mikropropagaci

  13. Somaklonální variabilita Příčiny zvyšující SV: Dlouhá expozice fytohormony (!2,4-D) Dlouhé intervaly mezi subkulturami Větší riziko při tvorbě adventivních než při množení z axilárních pupenů (a meristémů) Rhododendron

  14. 3. Narušení tvorby kořenů • nadměrná produkce adventivních kořenů • špatná tvorba adventivních kořenů

  15. 4. Nežádoucí nadprodukce a oxidace fenolických látek • Hnědnutí média • Odumírání explantátu

  16. Proč vzniká? • Obranná reakce proti možnému vniknutí infekce • Fytotoxické substance

  17. Jak se nežádoucí nadprodukci fenolických látek bránit? • časté pasážování (tekuté medium) • počáteční kultivace v chladu, v klidu • příměsi do media (AU – aktivní uhlí, PVP - polyvinylpyrolidon…)

  18. Jak se bránit nežádoucí oxidaci fenolických látek? • Preparace pod hladinou vody nebo antioxidační směsi AOX (10% k.citronová a 15% k. ascorbová) • inkubace explantátů (5-30 min v AOX směsi) • počáteční kultivace v chladu, v klidu • příměsi do media (AA – kyselina ascorbová)

  19. Pupenové kultury dřevin

  20. Hormonální regulace mikropropagace z pupenů CK CK CK (AUX) AUX AUX (AUX) (AUX) (bez RR) (GA)

  21. Postup - založení pupenové kultury dřevin • 1/ důkladné promytí tekoucí vodou • 2/ propláchnutí 70% ETOH • 3/ povrchová sterilizace 15 min 20% SAVO na třepačce • 4/ propláchnutí sterilní dest. vodou (3x) • 5/ odstranění krycích šupin (* antioxydační směs kys. ascorbové 10% a citronové 15%) • 6/ odříznutí pupenu s 2 mm lodyhy (*) • 7/ přenesení do zkumavky - popis

More Related