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Faculdade de Ciências Farmacêuticas- Universidade de São Paulo Biologia Molecular Aplicada as Análises Clínicas. Review: The real-time polymerase chain reaction. Kubista et al., Molecular Aspects of Medicine 27 (2006) 95–125. Daniela Nunes Juliano Bertinato Luciene Lima Clóvis Paniz.
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Faculdade de Ciências Farmacêuticas- Universidade de São Paulo Biologia Molecular Aplicada as Análises Clínicas Review:The real-time polymerase chain reaction Kubista et al., Molecular Aspects of Medicine 27 (2006) 95–125. Daniela Nunes Juliano Bertinato Luciene Lima Clóvis Paniz
Tipos de primers • Vantagens: • se cDNA for clonado; • Mais eficiente e menos dependente da temperatura • Desvantagens: • se RNAm estiver degradado, a transcrição pode não alcançar a sequencia alvo da PCR. • Viés para ampliconlocalizado próximo a 3’ terminal do RNAm • Não transcreve RNAm sem cauda poliA – genes de histonas na maioria dos eucariotos e na maioria dos procariotos
Tipos de primers • Vantagens: • Para amostras degradadas , procariotos e RNAr é a melhor escolha • Copiam todos os tipos RNAs • Nanômeros se ligam mais fortemente ao RNA e são melhores para altas temperaturas • Desvantagem: • rendimento depende da conformação do RNAm - conformação primária.
Tipos de primers • Necessita de temperaturas elevadas- regiões mais acessíveis; • Vantagem: • Para poucas quantidades de RNA. • Desvantagem: • Dependente da sequencia – dobramento do RNA • Proteínas de ligação: amostra sem purificação • Desenhando um primer específico o rendimento pode não ser tão bom
Problemas na RT PCR • One-step : menos sensível mas menos contaminação cruzada • Two-step • Existem diversos tipos de transcriptases que se diferem no tamanho e na T°C • Contaminação com DNA genômico • Solução: usar o No-RTcontrol: amostra normal sem a enzima transcriptase
Expressão gênica relativa • Normalização: compensar diferenças nas amostras • Procedimentos de normalização baseavam-se em métodos físicos: volume , massa, tamanho e n° de céls. • Heterogeneidade das amostras: Normalização com: • Add de RNA padrão ou, • Avaliação de gene de referência • Cada tecido: perfil diferente
Cálculo da expressão: • Correção para propagação de erros em amostras independentes deve ser aplicado: • A fórmula delta-Cttransformaosvalores de Ct emquantidadesrelativas de expressão: valor maior de expressão é igual a 1 Expressão= 2-ΔCT onde: ΔCT = CT gene de interesse - CT gene de referência
Exemplo: Amostra 1 Média CT gene ABCG2: 29,2028551101684 Média CT gene GAPDH: 23,5415296554565 Cálculo: Expressão= 2-(29,2028551101684-23,5415296554565) Expressão= 0,0145200460052491
Quando usar 2-ΔΔCT? MÉTODO COMPARATIVO: A pergunta é: QUANTAS VEZES A EXPRESSÃO GÊNICA DE UM DETERMINADO GENE , NUMA DETERMINADA CONDIÇÃO É DIFERENTE DE OUTRA CONDIÇÃO? • Exemplo 1: culturacelular- céltratada e nãotratada 2-(Ct,Target - Ct,endog)Time x - (Ct,Target -Ct,endog)Time 0 • Exemplo 2: célula HPV+ tratada versus HPV-tratada 2-(Ct,Target - Ct,endog) HPV+ - (Ct,Target -Ct,endog) HPV- LIVAK, K.J.; SCHIMITTGEN, T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method. Methods, v25, n.4, p.402-8, 2001.