E N D
1. Tömegspektrometria Mintaelokészítés, elválasztástechnikák
OKLA 2011
2. Tematika Ionizációs módszerek
Tömeganalizátorok
Mintaelokészítés, elválasztástechnikák
MS és MS/MS módok
Spektrum kiértékelés
Biológiai és biokémiai alkalmazások
Proteomika, Peptid sequenálás, Protein analízis
Diák: http://applchem.science.unideb.hu (OKTATÁS)
3. Muködési elv
4. Ionizációs módszerek Electron impact (EI)
Chemical ionization (CI)
Atmospheric pressure (API)
Electrospray (ESI)
Matrix assisted laser desorption/ionization (MALDI)
Direct analysis in real time (DART)
5. Tömeganalizátorok Magnet (B)
Time-of-flight (TOF)
Quadrupole (Q)
Ion Traps (2D, 3D IT)
Ion-Cyclotron Resonance (ICR)
Orbitrap (OT)
6. Miért van szükség mintaelokészítésre? Az analitok számos különbözo mátrixban lehetnek
Extrakció (kinyerés)
Tisztítás
7. Mintaelokészítés nélkül
8. Zavaró hatás pl. Ion supression A zavaró vegyületek csökkenthetik az analit ionizációját és a módszer érzékenységét
Versengés az ionforrásban
Nagy koncentrációjú szennyezok elnyomhatják az analit jelét
9. Hogyan kezdjünk hozzá? Milyen muszerünk van?
Ionizációs módszer?
Minoségi/mennyiségi meghatározás
Érzékenység/koncentráció
Analízis ido
Mintaelokészítés, derivatizáció
Minél rövidebb annál jobb
10. Mintaelokészítés Az analit elválasztása a zavaró mátrixtól
Pl: metabolitok meghatározása vérbol ? zavaró fehérjék eltávolítása szükséges
Extrakció, szurés a sótartalom eltávolításához
Kapcsolt elválasztástechika (GC, LC)
Analit koncentrációjának növelése
Pl: növényvédo szerek kimutatása ivóvízbol ? kinyerés, bepárlás szükséges
Derivatizáció (egyszeru, gyors legyen)
Növelheto a vegyületek illékonysága ? GC
11. Elválasztástechnikák
12. Folyadék-folyadék extrakció
13. Elválasztástechnikák
14. Solid Phase Extraction (SPE) Kromatográfiás elven muködik
Töltött kolonnák
Jól megalapozott technológia
Számos irodalmi referencia
Tiszta extraktum
Jó visszanyerés poláris vegyületeknél
A mintát folyadékfázisba kell hozni
Gravitációs, nyomás vagy vákuum segített megoldások
Automatizálható
15. Oszlop típusok Normál fázisú
Poláris állófázis
Apoláris mozgófázis
Fordított fázisú
Leggyakoribb módszer
Apoláris állófázis
Poláris mozgófázis
Ion cserélo
Kation/anion cserélo oszlop
Puffer vagy ionos mozgófázis
16. Szilárdfázisú extrakció
17. Szilárdfázisú extrakció
18. Szilárdfázisú extrakció
19. Szilárdfázisú extrakció
20. Tisztítás
21. Zip Tip
22. Elválasztástechnikák
23. Szurés
24. Elválasztástechnikák
25. Bepárlás
26. Elválasztástechnikák
27. Csapadékképzés Fehérjék kinyerése vagy eltávolítása
Pl. Acetonnal:
Aceton hozzáadása a fehérje oldathoz
Inkubálás: -20°C éjszakán át, szárazjégen 2-3 h
Centrifugálás (-4°C, 10 perc), felülúszó eltávolítása
Mosás 100% acetonnal (-20°C)
Bepárlás vákuummal, tárolás -20°C-on
28. Muszeres elválasztástechnikák
29. 1D és 2D gélelektroforézis PAGE: poli-akrilamid gél elektroforézis
SDS: nátrium-dodecil-szulfát
2D
Molekulatömeg
izoelektromos pont
30. 1D és 2Dgélelektroforézis
31. Muszeres elválasztástechnikák
32. Folyadékkromatográfia A szilárd állófázis és a folyadék mozgófázis közötti megoszláson alapszik
Az állófázissal erosebb kölcsönhatásban lévo anyagok késobb eluálódnak
Normál és fordított fázisú kromatográfia
Izokratikus és gradiens elúció
Nem a tökéltes elválasztás, hanem a reprodukálhatóság a fontos!
33. Mozgófázis (oldószer, eluens) Nagy tisztaságú, 0.45 ľm-es szuron leszurt, gázmentesített oldószerek
Polaritási sorrend: (apoláris ? poláris)
Hexán, széntetraklorid, kloroform, acetonitril, izopropanol, metanol, víz
Pufferek: pl. foszfát, tris helyett illékony pufferek
34. Kromatográfiás oszlop (kolonna) Normál fázisú, fordított fázisú (szilika, C8, C18)
35. Kolonna paraméterei Szemcseméret: 5 ľm, 3.5 ľm, 1.7 ľm
Töltet minosége: coated, SD, XDB
Hossza: 30-150 mm
Belso átméroje: 1 mm, 2.1 mm,
4.5 mm
Polaritása (normál, fordított)
36. Oldószererosség hatása az elválasztásra (C18 kolonna)
37. LC és MS összekapcsolása Áramlási sebesség és ionforrás
1 ml/min APCI (nagyobb hom., és gázáram)
0.1 ml/min ESI (splitter)
38. Kerülendo szennyezések Só és puffer koncentráció <10 mM
Csúcsszélesedést, kisebb ionizációs hatásfokot okozhat
Víz és Acetonitril preferált oldószerek
Minta tárolása kisüvegekben, muanyag helyett
Felületaktív anyagok, glicerin eltávolítása!
39. Proteomika LC-MS/MS
40. Muszeres elválasztástechnikák
41. Méretkizárásos kromatográfia
42. Muszeres elválasztástechnikák
43. Ioncserés kromatográfia
44. Muszeres elválasztástechnikák
45. Gázkromatográfia Illékony vegyületek (származékképzés)
Interfész köti össze a kolonnát az ionforrással.
EI, CI ionizáció
46. GCMS kromatogram és spektrum
48. Szacharóz TMS származékaC36H86O11Si8 (MW = 918 m/z)