1.39k likes | 1.63k Views
第六章 基因的表达与调控 ( 上 ) 原核基因表达调控模式. 自然选择倾向于保留高效率的生命过 程。在每 30 分钟增殖一次的 10 9 细菌群体 中,若一个细菌变成 29.5 分钟增殖,经 过 80 天的连续生长后,这个群体中的 99.9% 都将具有 29.5 分钟增殖一倍的生 长速度。. 原核生物细胞的基因和蛋白质种类较 少,如大肠杆菌基因组约为 4.20 × 10 6 bp 共有 4 288 个开放读码框(表 6-1 )。据估 计,一个细胞中总共含有 10 7 个蛋白质分 子 。. 表 6-1 大肠杆菌、伤寒杆菌和尿殖道支原体基因组
E N D
第六章 基因的表达与调控 (上)原核基因表达调控模式 自然选择倾向于保留高效率的生命过 程。在每30分钟增殖一次的109细菌群体 中,若一个细菌变成29.5分钟增殖,经 过80 天的连续生长后,这个群体中的 99.9% 都将具有29.5 分钟增殖一倍的生 长速度。
原核生物细胞的基因和蛋白质种类较 少,如大肠杆菌基因组约为4.20×106bp 共有4 288个开放读码框(表6-1)。据估 计,一个细胞中总共含有107个蛋白质分 子。
表6-1 大肠杆菌、伤寒杆菌和尿殖道支原体基因组 中的基因总量比较与功能分析
每个大肠杆菌细胞有约15 000个核糖 体,50种核糖体蛋白、糖酵解体系的 酶、DNA聚合酶、RNA聚合酶等都是代 谢过程中必需的,其合成速率不受环境 变化或代谢状态的影响,这一类蛋白质 被称为永久型(constitutive)合成的蛋 白质。
另一类则被称为适应型或调节型 (adaptive or regulated),因为这类蛋 白质的合成速率明显地受环境的影响而 改变。如大肠杆菌细胞中一般只有15个 β-半乳糖苷酶,但若将细胞培养在只含 乳糖的培养基中,每细胞中这个酶的量 可高达几万个分子。
6. 1 原核基因表达调控总论 随着生物个体的发育,DNA分子能 有序地将其所承载的遗传信息,通过密 码子-反密码子系统转变成蛋白质,执行 各种生理生化功能。科学家把从DNA到 蛋白质的过程称为基因表达(gene expression),对这个过程的调节就称为 基因表达调控(gene regulation或gene control)。
图6-1基因表达的第一步是由RNA聚合酶拷贝DNA双 链中的模板链,生成与该序列完全互补的RNA链。
基因表达调控主要表现在以下二方面: 转 录 水 平 上 的 调 控 ( transcriptional regulation); 转 录 后 水 平 上 的 调 控 ( post-transcriptional regulation),包括 (1)mRNA加工成熟水平调控(differential processing of RNA transcrpt); (2)翻译水平调控(differential translation of mRNA)。
细菌的转录与翻译过程几乎发生在 同一时间间隔内,转录与翻译相耦联 (coupled transcription and translation)。真核生物中,转录产物 (primary transcript)只有从核内运转 到核外,才能被核糖体翻译成蛋白质 (图6-2)。
原核生物的基因调控主要是转 录调控,包括负转录调控和正转 录调控。 在负转录调控系统中,调节基 因 的 产 物 是 阻 遏 蛋 白 (repressor),阻止结构基因转 录。根据其作用特征又分为负控 诱导和负控阻遏二大类。
在负控诱导系统中,阻遏蛋 白不与效应物(诱导物)结 合时,结构基因不转录; 在负控阻遏系统中,阻遏蛋 白与效应物结合时,结构基 因不转录。阻遏蛋白作用于 操纵区。
在正转录调控系统中,调节基因的产 物是激活蛋白(activator)。根据其作 用特性分为正控诱导系统和正控阻遏系 统。 在正控诱导系统中,效应物分子(诱 导物)的存在使激活蛋白处于活性状 态;在正控阻遏系统中,效应物分子的 存在使激活蛋白处于非活性状态(图6- 3,表6-2)。
图6-3 细菌 中的转录 调控体系 。 a. 负 控 诱导系统 ; b. 正 控 诱导系统 ; c. 负 控 阻遏系统 ; d. 正 控 阻遏系统 。
σ因子在结构上具有同源性,所 以统称σ70家族,含有4个保守区 (图6-4),其中第2个和第4个保 守区参与结合启动区DNA,第2个 保守区的另一部分还参与双链DNA 解开成单链的过程。
图6-4 大肠杆菌中的б因子(以б70为 例)主要包括四个结构域。
σ54因子识别并与DNA上的-24 和-12区相结合(图6-5)。 σ70启动子只有在核心酶结合到 DNA链上之后才能与启动子区相结 合,而σ54则类似于真核生物的TATA 区结合蛋白(TBP),可以在无核心 酶时独立结合到启动子上。
图6-5 σ70 (上)和σ54 (下) 因子识别 并结 合在所调控基因上游的不同区域。
6. 2 乳糖操纵子与负控诱导系统 大 肠 杆 菌 乳 糖 操 纵 子 ( lactose operon ) 包 括 3 个 结 构 基 因 : Z 、 Y 和 A ,以及启动子、控制子和阻遏子等。 转录的调控是在启动区和操纵区进行 的。
3个结构基因各决定一种酶:Z编码-半乳糖苷 酶;Y编码-半乳糖苷透过酶;A编码-半乳糖苷 乙酰基转移酶。
β-半乳糖苷酶是一种β-半乳糖苷键的专一性 酶,除能将乳糖水解成葡萄糖和半乳糖外,还 能 水 解 其 他 β- 半 乳 糖 苷 ( 如 苯 基 半 乳 糖 苷)。 β-半乳糖苷透过酶的作用是使外界的β-半乳 糖苷透过大肠杆菌细胞壁和原生质膜进入细胞 内。 β-半乳糖苷乙酰基转移酶的作用是把乙酰辅 酶A上的乙酰基转移到-半乳糖苷上,形成乙酰 半乳糖。
6. 2. 1 酶的诱导—lac体系受调控的证据 一般情况下,lac+基因型大肠杆菌细胞 内β-半乳糖苷酶和透过酶的浓度很低, 每个细胞只有1 ~2 个酶分子。但是,在 乳糖培养基上酶的浓度很快达到细胞总 蛋白量的6%或7%,超过105个酶分子/细 胞。
在无葡萄糖有乳糖的培养基中,lac+ 细菌中将同时合成β-半乳糖苷酶和透过 酶。 用32P 标记的mRNA 与模板DNA 进行 定量分子杂交,表明培养基中加入乳糖 1~2分钟后,编码β-半乳糖苷酶和透过 酶的lac mRNA 量就迅速增加,去掉乳 糖后,lac mRNA量立即下降。
实验室常用两种乳糖类似物—异丙基 巯基半乳糖苷(IPTG )和巯甲基半乳 糖苷(TMG),在酶活性分析中常用发 色底物O-硝基半乳糖苷(ONPG)。因 为它们都不是半乳糖苷酶的底物,所以 又 称 为 安 慰 性 诱 导 物 ( gratuitous inducer)。
用35S标记大肠杆菌细胞(培养基中 没有半乳糖),将这些带有放射性的细 菌转移到不含35S的培养基中,加入诱导 物后β-半乳糖苷酶便开始合成。分离 纯化β-半乳糖苷酶,发现这种酶无35S 标记,说明这种酶是加入诱导物后新合 成的。
6. 2. 2 操纵子模型及其影响因子 Jacob 和Monod认为诱导酶(他们当 时称为适应酶)现象是个基因调控问 题,而且可以用实验方法进行研究,他 们通过大量实验及分析,建立了现在已 经被人们广泛接受的乳糖操纵子的控制 模型。
图6-9 Lac操 纵子的调控 模式。
A. Z、Y、A基因产物由同一条多顺反子mRNA分子 所编码。 B. 该mRNA分子的启动区(P)位于阻遏基因(I) 与操纵区(O)之间,不能单独起始半乳糖苷酶 和透过酶基因的高效表达。 C. 操纵区是DNA上的一小段序列(仅为26bp),是 阻遏物的结合位点。 D. 当阻遏物与操纵区相结合时,lac mRNA的转录起 始受到抑制。 E. 诱导物通过与阻遏物结合,改变其三维构象,使 之不能与操纵区相结合,诱发lac mRNA的合成。
图6-10 培养基中有 无诱导物对Lac mRNA及β-半乳糖 苷酶活性的影响
阻遏物lac I基因产物及功能 lac 操纵子阻遏物mRNA 是由弱启动子控 制下永久型合成的,该阻遏蛋白有4个相 同的亚基,每个亚基均含有347个氨基酸 残基,并能与1 分子IPTG 结合, 每个细胞 中有5~10个阻遏物分子。
β-半乳糖苷酶在乳糖代谢中的作用是 把前者分解成葡萄糖及半乳糖。如果将 葡萄糖和乳糖同时加入培养基中,大肠 杆菌在耗尽外源葡萄糖之前不会诱发lac 操纵子(图6-11)。
某大肠杆菌突变体,它不能将葡萄 糖-6-磷酸转化为下一步代谢中间物,该 细菌的lac基因能在葡萄糖存在时被诱导 合成。所以,不是葡萄糖而是它的某些 降解产物抑制lac mRNA的合成,科学上 把葡萄糖的这种效应称之为代谢物阻遏 效应(catabolite repression)。
cAMP与代谢物激活蛋白 cAMP是在腺苷酸环化酶的作用下由 ATP转变而来的,在真核生物的激素调 节过程中也起着十分重要的作用。 将细菌放在含葡萄糖的培养基中培 养,cAMP的浓度就低;如果培养基中 只有甘油或乳糖等不进行糖酵解途径的 碳源,cAMP的浓度就会很高。
大肠杆菌中的代谢物激活蛋白,由Crp基 因编码,能与cAMP 形成复合物。CRP 和cAMP都是合成lac mRNA所必需的, cAMP-CRP 是一个不同于阻遏物的正调 控因子,而lac操纵子的功能是在这两个 相互独立的调控体系作用下实现的。
图6-13 gal, lac 和ara操 纵子上游启 动子区与 CRP-cAMP 结合位点的 相对位置分 析
半乳糖、麦芽糖、阿拉伯糖、 山梨醇等在降解过程中均转化成葡 萄糖或糖酵解途径中的其他中间产 物,这些糖代谢中有关的酶都是由 可诱导操纵子控制的,被称为降解 物 敏 感 型 操 纵 子 (catabolite sensitive operon),由cAMP-CRP 调控。
图6-14 大肠杆菌lac操纵子启动区CRP-cAMP 及-35区,-10区序列分析。
cAMP-CRP复合物与启动子区的结 合是lac mRNA合成起始所必需的,因为 这个复合物结合于启动子上游,能使 DNA双螺旋发生弯曲,有利于形成稳定 的开放型启动子-RNA聚合酶结构。阻遏 物则是一个抗解链蛋白,阻止形成开放 结构,从而抑制RNA聚合酶的功能。
图 6-15 CRP- cAMP 与 上 游 DNA 位点结合 后造成模 板 DNA 沿 对称序列 中央发生 >90°的弯 曲
6. 2. 3 lac操纵子的调控区域—P、O区 P区(即启动子区)一般是从I基因结 束到mRNA转录起始位点下游5-10bp, 而O区(即阻遏物结合区)位于-7~+28 位,该区的碱基序列有对称性,其对称 轴在+11位碱基对。
图6-16 不同操纵 子启动区及O区相 对位置的比较。
6. 2. 4 lac操纵子中的其他问题 1、lac基因产物数量上的比较 在完全被诱导的细胞中,β-半乳糖苷 酶、透过酶及乙酰基转移酶的拷贝数比 例为1 :0.5 :0.2 ,这个比例在一定程度 上反映了以β-半乳糖苷作为唯一碳源时 细胞的需要。不同的酶在数量上的差异 是由于在翻译水平上受到调节所致。
①lac mRNA可能与翻译过程中的核糖体 相脱离,从而终止蛋白质链的翻译。因 此,存在着从mRNA的5'末端到3'末端的 蛋白质合成梯度。
②在lac mRNA分子内部,A基因比Z基 因更易受内切酶作用发生降解,因此, 在任何时候Z基因的完整拷贝数要比A基 因多。
2、操纵子的融合与基因工程 pur操纵子在染色体上位于lac操纵子沿转 录方向的下游,中间只隔了一个控制细胞对T6 噬菌体敏感性的tsx基因。pur操纵子被“嫁接” 到lac启动子上,形成融合基因。因为lac启动 子是一个很强的启动子,通过它可以使较弱启 动子的转录增强。