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クロマトグラフ (横軸:計測時間 縦軸:総電子量) 左が 2-MIB 、右がジェオスミン

実験 1 国環研から分譲してもらった NIES- 30、 NIES- 512、 NIES-611 を分析可能な細胞数( 100 万細胞 / ml)まで増殖させる. 実験・分析方法. 実験 2 実験 1 で増殖したそれぞれの株の初期濃度を固定(約 1 万細胞 / ml)して、同様に 100 万細胞 / mlまで増殖させる。. 実験 3 初期濃度を固定(約 1 万細胞 / ml)して3種類の強度が異なる赤色光、緑色光のもとで培養し、増殖の様子を観察。. 実験 A

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クロマトグラフ (横軸:計測時間 縦軸:総電子量) 左が 2-MIB 、右がジェオスミン

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Presentation Transcript


  1. 実験1 国環研から分譲してもらったNIES-30、NIES-512、NIES-611を分析可能な細胞数(100万細胞/ml)まで増殖させる 実験・分析方法 実験2 実験1で増殖したそれぞれの株の初期濃度を固定(約1万細胞/ml)して、同様に100万細胞/mlまで増殖させる。 実験3 初期濃度を固定(約1万細胞/ml)して3種類の強度が異なる赤色光、緑色光のもとで培養し、増殖の様子を観察。 実験A 国環研から分譲してもらったNIES-25、NIES-27、NIES-2124、NIES-2128、NIES-90、NIES-512をクリーンベンチを用い滅菌状態で培養する。 培養条件 分析1 実験1で増殖した株から液体試料100ml、液体試料100mlをろ過,冷凍処理した試料より光合成色素分析とGC-MSによるカビ臭物質の分析を行う。 分析2 実験2において増殖した株を分析1と同様に分析する。 分析A 実験Aにおいて増殖した株をGC-MSを用いてカビ臭物質の分析を行う。 クロマトグラフ (横軸:計測時間 縦軸:総電子量) 左が2-MIB、右がジェオスミン マススペクトル (縦軸:強度 横軸m/e) 上図:2-MIB 下図:ジェオスミン 背景・目的 全国のダム貯水池、自然湖沼で存在が確認されている藍藻Phormideium tenueは2-MIB(ジメチルイソボルネオール)によるカビ臭を発生させることが知られている。現在Phormidium tenueは誤同定によって複数種を含んでおり、緑株と茶株の存在が知られている。そこで、今回のプロジェクトではこれまでPhormidiumの代表的な株として、多くの研究で使用されてきた国立環境研究所の3種の株を用いて室内実験や野外観測を行い、Phormidiumのカビ臭発生の特性およびPhormidium自体の増殖についての分光特性を調べる。また、カビ臭の発生抑制の方法を理論的に確立することを目的とする。 これまでの結果、考察 <実験、分析1~3について> ・NIES-30については白色光では増殖しなかったが赤色光と緑色光で増殖し、特に強い赤色光での増殖が大きかった。ただし他の種類と比較して増殖し始める時期が遅い。また、NIES-512については他の種より増殖のピーク時期が早く、赤色光より緑色光で増殖が大きい。NIES-611はもっとも増殖スピードが早く、赤色光、緑色光共に強い強度の光で大きく増殖した。光合成色素、カビ臭物質については現在分析中である。 <実験、分析A~について> ・NIES-512以外のサンプルからは2-MIB、ジェオスミンは検出されなかった。現在、NIES-512、NIES-2128については1週間ごとに、それ以外の主に関しては2週間に1度植え継ぎというペースが定まってきている。 Fig.2 experiment-A Fig.1 experiment-1 Fig.3 growth curve(experiment-1) GC-MSによる分析 カビ臭の原因になると考えられている物質 ・2-MIB ・ジェオスミン GC-MSを用いてサンプル中にこれらの物質が含まれているかどうか調べる <手順> ・スタンダード(2-MIB+ジェオスミン):100μg/mlを10μg/mlまで希釈 ・サンプル:NIES-2124、NIES-2128、NIES-27(寒天培地培養のもの) ・サンプル抽出: 寒天培地にサンプルが生えた状態のままメタノール5mlを注入し30分静置→2-3ml回収 また、培地についているサンプルをかき取り、湿潤重量をはかる(20mg程度)。 バイアルに回収した液体とはがしたサンプルを入れ、ボルテックスした後、200Rで2分遠心分離する。 Fig.4 growth curve(experiment-2) Fig.5 growth curve(experiment-3-1) Fig.6 growth curve(experiment-3-2) Fig.7 growth curve(experiment-3-3) Fig.9 GC-MS analysis (experiment-A-2) Fig.8 GC-MS analysis (experiment-A-1) これからの課題、方針 <実験、分析1~3について> ・実験2の終了後、実験2において赤色光で培養していたものを緑色光に移し、逆に緑色光で培養していたものは赤色光で培養し、さらに増殖した細胞を同様に分析し、比較によりどのような培養条件が株の増殖や臭気により影響を与えるか検討する。 <実験、分析A~について> ・実験1~3と同様に増殖カーブを取り、安定したカーブを求められるようになったら2-MIB、ジェオスミン、NIES-512からゲノムを取り、シークエンスして互いの整合性を検討する。

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