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Principes d’Immuno-histo-chimie et d’Immunofluorescence : (P. Levillain)

Principes d’Immuno-histo-chimie et d’Immunofluorescence : (P. Levillain). Principes généraux. Mise en évidence d’un constituant cellulaire ou tissulaire par une réaction antigène anticorps

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Principes d’Immuno-histo-chimie et d’Immunofluorescence : (P. Levillain)

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Presentation Transcript


  1. Principes d’Immuno-histo-chimie et d’Immunofluorescence : (P. Levillain)

  2. Principes généraux • Mise en évidence d’un constituant cellulaire ou tissulaire par une réaction antigène anticorps • On utilise un anticorps connu qui est dirigé contre un antigène que l’on recherche sur la préparation histologique ou cytologique • Puis on met en évidence la fixation éventuelle de l’anticorps sur la lame par un chromogène (IHC) ou un fluorochrome (IF)

  3. 1 - LES ANTICORPS

  4. Les anticorps primaires(ou spécifiques) • Ce sont les anticorps utilisés pour mettre en évidence la présence de l’antigène recherché • Il en existe deux types : • Les AC polyclonaux • Les AC monoclonaux

  5. ANTICORPS POLYCLONAUX Production d’anticorps par des animaux hyper-immunisés

  6. ANTICORPS MONOCLONAUX Technique des hybridomes

  7. Milieu HAT • Hypoxanthine • Aminoptérine • Thymidine • L’aminoptérine bloque une voie métabolique qui peut être contournée par l’utilisation d’hypoxanthine et de thymidine sauf par les cellules du myélome

  8. Anticorps • Polyclonaux : Inconvénients : spécificité relative et variable selon le lot Avantages : 1) coût généralement moins élevé 2) plusieurs épitopes reconnus => marquage plus intense • Monoclonaux : • - spécificité définie • - cette spécificité peut entraîner une moindre sensibilité en cas d’altération des épitopes

  9. Antigènes masqués par la fixation • Restauration antigénique • Chauffage des coupes histologiques (autocuiseur, bain marie, micro-ondes) • Dans une solution acide ou alcaline selon l’anticorps utilisé

  10. 2 – LA REVELATION DU COMPLEXE ANTIGENE - ANTICORPS Immunofluorescence

  11. Immunofluorescence directe fluorochrome

  12. Immunofluorescence à deux étages fluorochrome

  13. Microscope à fluorescence (épi-illumination)

  14. Différents types de fluororochromes

  15. Fluorochrome Fluorochrome Immunofluorescence : Résumé INDIRECTE DIRECTE Cryocut Sérums utilisés Dépôts des sérums sur lames Incubation en chambre humide

  16. Immuno-histo-chimie et Immuno-cyto-chimie

  17. Anticorps primaire conjugué péroxydase

  18. PAP

  19. Autres techniques de révélation

  20. Streptavidinebiotine

  21. Polymères (type Envision)

  22. Application (méthode streptavidine-biotine) • Prélèvements pour histologie standard + IFD en congélation • Préparation des Coupes En congélation: 3 à 4 microns, +/- fixation acétone, séchage, rinçage En paraffine: lames blanches 4 µm puis déparaffinage manuel bains d’alcool successifs puis démasquage antigénique (auto-cuiseur)

  23. Application (méthode streptavidine-biotine) • Technique de révélation classique « streptavidine-biotine-peroxydase »

  24. Résumé du protocole Anticorps primaire puis AC secondaire biotinylé Déparaffinage Démasquage Crayon hydrophobe Streptavidine-peroxydase Substrat + DAB Hématoxyline Montage des lames

  25. Polymères • Technique EnVision : amplification par molécule « porteuse »

  26. Résumé polymère (Kit EnVision) Étape 1 : Blocage des péroxydases endogènes Étape 2 : Anticorps primaire Étape 5 : Contre coloration à l’hématoxyline Incubation Étape 3 : Polymère marqué à la HRP Étape 4 : Substrat chromogène

  27. Technique du double marquage

  28. Technique de double marquage en microscopie optique On doit utiliser deux enzymes différentes

  29. IM et IHCcomparaisonDifficultés et limites

  30. IF / IHC IMMUNO-FLUORESCENCE : Avantage : faible coût et technique facile et rapide mais - ne permet pas la conservation des lames - peu informative sur la morphologie IMMUNO-HISTOCHIMIE : - permet d’apprécier la morphologie des lésion - permet la conservation des lames

  31. Fixation/Congélation

  32. PB = extra cellulaire

  33. Vascularite

  34. HMB 45Marqueur des mélanosomes (cytoplasmique) Chromogène : fast red

  35. RP et noyaux

  36. Difficultés liées à la technique Fluorescence : - découplage du fluorochrome (bruit de fond) (=> diminution bruit de fond par Bleu Evans) - fluorescence spontanée (f. élastiques, glandes sudorales…) - fixation sur des protéines d’origine sérique (lupus) - fixation par des protéines électronégatives (donc tamponner en pH alcalin, bloquer les sites) - « fading » (conservation au froid et obscurité, lecture rapide, montage en milieu alcalin et glycériné)

  37. Difficultés liées à la technique IHC : - peroxydases endogènes - biotines endogènes - zones de nécrose - absorption passive (histiocytes)

  38. Difficulté non liée à la technique • un antigène peut posséder un ou plusieurs épitopes en commun avec un autre Ag (réactions croisées) • CD 10 (cALLA) et cellules du rein • CD 56 (NCAM) cellules NK et tumeurs neuroendocrines

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