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内容概要 • 不同样品RNA提取最适方法 • RNA纯度与质量考察 • RNA提取常见问题及解决方案 • 常见样品DNA提取 • 特殊样品DNA提取 • DNA分离纯化中常见问题分析
RNA提取流程 酒精沉淀 或介质吸附 样品 裂解液 液氮研磨 或其他方法处理 抽提 离心洗涤 干燥溶解 或洗脱 细胞裂解 上层溶液
RNA提取常用方法---沉淀方法 • 沉淀法:异丙醇或乙醇 • 介质吸附法:
RNA提取常用方法---裂解方式 异硫氰酸胍/苯酚法 • 在变性剂异硫氰酸胍的作用下,细胞被裂解,同时核蛋白体上的蛋白变性,核酸释放; • 释放出来的DNA和RNA由于在特定pH下溶解度的不同而分别位于整个体系中的中间相和水相,从而得以分离; • 有机溶剂抽提,沉淀,得到纯净RNA。 胍盐 /β-巯基乙醇 • 盐酸胍裂解样本 ,抑制 RNase 的活性 ; • β-巯基乙醇变性蛋白
BioTeke的RNA提取试剂具有明显的优势 • 在经典试剂的基础上,不断升级。 • 多款高品质的RNA提取试剂: • Tri pure (Trizol) • RNApure(Trizol法的升级产品)
组织/细胞样品RNA提取 • 材料: • 小鼠肝脏组织 • 方法: • BioTekeRNApure高纯总RNA • 快速提取试剂盒 • 0.1g样品组织 • 结果: 1 2 3 4 图:小鼠肝脏组织RNA
RNApure 高纯总RNA快速提取试剂 1 2 3 图片说明: 1 BioTeke RNAclean 2 BioTeke TRIpure (TRIzol法) 3 BioTeke RNApure 离心柱型 (注:本图实验材料为植物叶片)
同一样品基因组DNA和RNA分提 原理: 根据基因组DNA和RNA在硅基质膜上的结合条件不同,用两根离心吸附柱分别提取基因组DNA和RNA。
特殊样品RNA提取---血液 图1全血样品溶解在TRI pure LS Reagent试剂后的状态 图2泳道1与2,在-80度保存一个月后的提取结果。M泳道:标准的Hela细胞RNA
多糖多酚植物样品RNA的提取 • 材料: • 松针、冬青、香蕉、木菠萝和杨树 • 方法: • 通用植物总RNA提取试剂盒 • (离心柱型) • 0.1g样品组织 • 结果: • 得率:约35-40μg • 纯度:OD260/OD280=1.82-1.95 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 试剂盒适用范围: 水稻种子、小麦种子、玉米种子、高粱种子、拟南芥种子、大豆种子、苹果、葡萄、香蕉、棉花、龙眼、荔枝、各种草坪牧草植物、各种树木、各种花卉等绝大多数植物 图片说明:1、2 杨树;3、4 香蕉;5、6 松针;7、8 冬青;9 、10 木菠萝
Micro RNA提取 • 提取原理: • 传统方法:先提取总RNA然后跑胶回收或沉淀Micro RNA。 • 新方法:通过裂解液裂解和酸酚分层后过柱两次,一次去除基因组DNA和大片段RNA,后一次吸附Micro RNA,然后漂洗收集。 1 2 3 4 • 新方法特点: • 高效分离小RNA,同时分离总RNA • 可用于miRNA、siRNA和snRNA的分析 • 适用各种来源的样品 • 提取时间短,约30分钟完成实验 图片说明:1、2DNA和大RNA;3、4Micro RNA (材料为小鼠肝脏组织)
RNA纯度与质量考察 • 生物大分子具有共轭双键,在260和280nm波长处有光吸收峰。 • 纯度:紫外分光光度计测定所提总RNA在260nm和280nm波长处的光吸收,以A260/A280的比值来判断总RNA的纯度。 • 质量:甲醛变性琼脂糖凝胶电泳鉴定。
RNA提取常见问题及解决方案 • RNA 的降解 • OD260 /OD280 比值偏低 • 电泳带型异常 • 下游实验效果不佳
RNA的降解 • 新鲜细胞或组织: • 裂解液的质量 • 外源RNase的污染 • 裂解液的用量不足 • 组织裂解不充分 • 另外某些富含内源酶的样品 (如脾脏,胸腺等),很难避免 RNA 的降解。 • 建议在液氮条件下将组织碾碎,并且匀浆时使用更多裂解液。
RNA的降解 • 冷冻样品: • 样品取材后应立即置于液氮中速冻,然后可以移至-70℃冰箱保存。样品要相对小一点; • 先用液氮研磨,再加裂解液匀浆; • 样品与裂解液充分接触前避免融化,研磨用具必须预冷,研磨过程中及时补充液氮。
RNA的保护 • 采集样品的保护: • 通常用液氮保存 • 样品保护剂RNAfixer,样品浸泡其中可以在37℃保存一天,25℃一周,4℃一个月,-20℃一年左右。 • 环境中RNase的清除: • DEPC处理各种实验器具 • RNAsafe对溶液中RNase进行清除。 • RNA酶喷雾清除剂,可对固体表面的RNase起到清除的作用,更大程度上避免RNase的污染。
OD260 /OD280 比值偏低 蛋白质污染: • 不要吸入中间层及有机相,加入氯仿后首先混匀,并且离心分层的离心力和时间要足够。 • 减少起始样品量,确保裂解完全、彻底 • 解决办法:重新抽提一次,再沉淀,溶解。 苯酚残留: • 不要吸入中间层及有机相,加入氯仿后首先混匀,并且离心分层的离心力和时间要足够。 • 解决办法:重新抽提一次,再沉淀,溶解。
OD260 /OD280 比值偏低 抽提试剂残留: • 确保洗涤时要彻底悬浮 RNA,并且彻底去掉 75% 乙醇。 • 解决办法:再沉淀一次后,溶解。 • 设备限制: • 测定OD260 及OD280 数值时,要使OD260 读数在 0.10 - 0.50 之间。此范围线性最好。 用水稀释样品: • 测 OD 时,对照及样品稀释液请使用 10 mM Tris,pH 7.5。用水作为稀释液将导致比值的降低。
电泳条带异常 非变性电泳: • 上样量超过 3μg,电压超过 6V/cm,电泳缓冲液陈旧,均可能导致 28S 和 18S 条带分不开。 • 变性电泳条带变淡: • EB 与单链的结合能力要差一些,故同样的上样量,变性电泳比非变性电泳要淡一些; • 甲醛的质量不高 。
抽提试剂的残留 • 75% 乙醇洗涤 • 样品中杂质的残留 • 多糖等杂质,再次沉淀 • DNA 污染 • 使用RNase-Free 的 DNase I 消化抽提RNA 下游实验效果不佳(RNA降解)
不同样品基因组DNA提取 • 常见样品基因组DNA提取 • 细胞/组织/细菌/血液基因DNA提取 • 植物材料DNA提取 • 特殊样品基因组DNA提取 • 大量血液样品DNA提取 • 环境微生物DNA提取 • 临床样本DNA提取 • DNA分离纯化中的常见问题分析
基因组DNA提取流程-细胞裂解 • 化学方法 • CTAB法:适用于植物材料等。是一种阳离子去污剂,溶解细胞膜,与核酸结合。在高盐下溶解释放DNA。 • SDS法:适用于血液,细胞,动物组织,细菌,酵母等 • 物理方法 机械剪切,超声波破碎,研磨匀浆等。易造成DNA断裂。 • 酶法 蛋白酶K BioTeke基因组DNA提取系列试剂盒综合利用上述方法
组织/细胞/细菌/血液基因组DNA提取 提取原理: • 特点: • 不需要使用有毒的氯仿、苯酚等试剂 • 多次柱漂洗确保高纯度;长度可达30-50Kb
植物材料基因组DNA提取 提取原理: 玉米叶片基因组DNA提取 (使用新型快速植物基因组DNA提取试剂盒)
特殊样品基因组DNA提取 传统方法适用于所有材料基因组DNA的提取? 比如大量血液? 比如土壤/粪便中的微生物基因组DNA的提取? 比如病毒及其他微量样品DNA的提取? NO!
中量/大量血液基因组DNA提取 • 传统方法 • 消化后,用酚/氯仿抽提, • 时间长,损害操作人员健康 • BioTeke创新 • 不用蛋白酶消化 • 不用酚/氯仿抽提 • 结果: • 得率:约75-250μg /5mL血样 • 纯度:OD260/OD280=1.87-1.95 5ml全血基因组DNA提取电泳结果
土壤/粪便微生物基因组DNA提取 • 其他品牌试剂盒存在缺点: • 采用玻璃珠或钢珠破碎,导致基因组断裂严重; • 必须购买破碎专用设备,增加使用成本; • 采用包括玻璃奶、离心吸附柱串联的纯化方式,导致DNA大量损失,得率很低,很难真实反映土壤微生物的多样性。 • BioTeke的技术创新: • 采用酶法破碎,保证基因组的完整性; • 用异丙醇沉淀DNA,DNA无损失。
临床样品基因组DNA提取 • 病毒基因组DNA提取 • 酵母基因组DNA提取 • 口腔拭子DNA提取 • 微量样品DNA提取 • 石蜡组织DNA提取 • 头发DNA提取
一步法DNA提取扩增 原理: 综合微量样品基因组DNA提取和高效的PCR扩增试剂。从毛发、石蜡组织等微量组织中高效提取足够浓度的DNA,然后进行PCR扩增。操作简单、方便,可对大量样品同时进行操作。
基因组DNA分离纯化中的注意事项 • 保证基因组DNA的完整性和纯度 • 提高DNA的洗脱效率 • DNA的储存
基因组DNA分离纯化中的注意事项 • 保证基因组DNA的完整性和纯度 • 提高DNA的洗脱效率 • DNA的储存 • 简化操作步骤,缩短操作时间 • 减少物理因素对DNA的降解,震荡、搅拌等 • 减少化学物质对DNA的降解,操作多在pH4-10 • 防止基因组DNA的生物降解:DNase
基因组DNA分离纯化中的注意事项 • 保证基因组DNA的完整性和纯度 • 提高DNA的洗脱效率 • DNA的储存 • 洗脱液65度预热10分钟 • 洗脱体积不小于30μL • 洗脱2次或者3次
基因组DNA分离纯化中的注意事项 • 保证基因组DNA的完整性和纯度 • 提高DNA的洗脱效率 • DNA的储存 • 可长期储存于pH=7.0的ddH2O或TE • 不易制成干品储存 • 分装低温保存
如何提高微量核酸提取或回收后的浓度 • 核酸助沉剂的应用 • 微量吸附柱的应用---15μl洗脱体系 • 质粒提取 • 胶回收或PCR产物回收 • 微量细胞/组织DNA/RNA提取 • 病毒DNA/RNA提取 • 微量临床样本DNA/RNA提取
不同样品核酸提取、扩增、荧光定量PCR完美解决方案不同样品核酸提取、扩增、荧光定量PCR完美解决方案 ---Real-time qPCR攻略 北京百泰克生物技术有限公司(北京市海淀区上地信息路15号)
主要内容 • RT-PCR原理 • Real-time qPCR原理及应用 • Real-time qPCR成功关键 • Real-time qPCR数据分析 • Real-time qPCR常见问题及解决方案
中心法则与RT、PCR PCR DNA RT RNA
反转录相关因素 • 逆转录反应可以以随机引物、oligo(dT)或基因特异性的引物(GSP)起始。 • 提取RNA的质量会影响到RT的产量及cDNA的完整性。 • 整个过程要求无RNA酶操作。 • 反转录酶、RNA酶抑制剂都会对产物的质量造成一定的影响。
Super M-MLV反转录酶 • 高效的逆转录活性,且无RNaseH活性 • Thermo M-MLV反转录酶 • 高效的逆转录活性,且无RNaseH活性 • 适合合成长片段的cDNA,有很强的模板兼容性,对高GC含量(75%以上)和结构复杂的模板效果显著 • 在42℃-60℃具有较好的热稳定性。
One step RT-PCR 模板: 使用BioTeke公司的RNApure 总RNA提取试剂盒提取的鸡肝脏组织RNA 目的片段:管家基因β-Actin 反应体系: 反应程序:
RT-PCR相关产品 反转录酶及试剂盒系列产品讲座期间特价优惠! Super M-MLV反转录酶,10000u/198元 Super RT Kit cDNA 第一链合成试剂盒50次,特价490元 Super One-step RT-PCR Kit 一步法RT-PCR试剂盒50次,特价880元 Thermo 系列产品买二赠一! Thermo M-MLV反转录酶,10000u/580元 Thermo RT Kit cDNA 第一链合成试剂盒50次,价格1200元 Thermo One-step RT-PCR Kit 一步法RT-PCR试剂盒50次,价格1400元
RT-PCR原理 • Real-time qPCR原理及应用 • Real-time qPCR成功关键 • Real-time qPCR数据分析 • Real-time qPCR常见问题及解决方案
实时荧光定量PCR技术的应用 • 基因表达差异分析 • 拷贝数分析 • SNP检测 • miRNA定量 • 转基因成分定量分析 • 临床诊断、疾病及药物研发等
Real-time qPCR原理 • 如何对初始模板定量 • 荧光信号如何产生?
实时定量PCR 化学原理 两个重要图形 非探针 探针 扩增曲线 熔解曲线 Real-Time qPCR主要概念
Real-Time qPCR曲线的意义 扩增曲线 熔解曲线 图片为:首都医科大学演示实验结果 材料:小鼠肝脏 基因:β-actin
荧光染料和荧光探针 实时荧光定量 PCR 的化学原理包括探针类和非探针类两种。 • 非探针类则是利用荧光染料(如SYBR Green I)或者特殊设计的引物(如LUX Primers)来指示扩增的增加。 • 探针类(TaqMan探针和分子信标)是利用与靶序列特异杂交的探针来指示扩增产物的增加。 • 后者由于增加了探针的识别步骤,特异性更高,但前者则简便易行。