1 / 1

Смирнова Д.В. , Кокшаров М.И. , Угарова Н.Н.

С. 8.15. Смирнова Д.В. , Кокшаров М.И. , Угарова Н.Н. Химический факультет МГУ им. М.В. Ломоносова , Москва. Целями работы были: Получение и изучение свойств гибридного белка люцифераза- биотин связывающий домен для люциферазы Luciola mingrelica .

gayle
Download Presentation

Смирнова Д.В. , Кокшаров М.И. , Угарова Н.Н.

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. С.8.15. Смирнова Д.В., Кокшаров М.И., Угарова Н.Н. Химический факультет МГУ им. М.В. Ломоносова, Москва • Целями работы были: • Получение и изучение свойств гибридного белка люцифераза- биотин связывающий домен для люциферазыLuciola mingrelica. • Исследование возможности его применения для специфического определения содержания клеток Salmonellatyphimurium. 1. Введение В настоящее время актуальной задачей является создание новых биоаналитических высокочув-ствительных и высокоспецифичных реагентов для определения нано количеств различных физиологически активных веществ и патогенных микроорганизмов. Одним из широко развиваемых путей получения таких систем является использование гибридных белков, совмещающих в себе высокую чувствительность белка-детектора с высокой селективностью белка, способного связываться с изучаемой мишенью. В результате чего происходит фиксация белка-детектора на поверхности мишени. В качестве белка детектора могут выступать различные люциферазы, в частности люцифераза светляков, обладающая высокой чувствительностью вследствие высокого квантового выхода биолюминесцентной реакции, низким фоновым сигналом, который определяется стабильностью субстрата, а так же простой процедурой наработки и выделения белка в необходимых количествах. В качестве селективного компонента могут быть использованы . стрептавидин или биотин-связывающий домен, имеющие высокую константу связывания. Биотинилирование люциферазы возможно при гибридизации фермента с биотин связывающими доменами. Биотин связывающие домены содержатся в таких белках, как ацетилкокарбоксилаза и пируваткарбоксилаза, имеющих в активном центре остаток лизина, способный образовывать амидную связь с биотином при помощи биотин-лигазы [1]. Таким образом, биотинилирование белков, коньюгированных с биотин-связывающими доменами происходит непосредственно при синтезе гибридных белков, in vivo. В литературе подобные белки описаны для люцифераз светляков Photinus pyralis [2-3]иLuciola lateralis [4-5]. Для люциферазы светляков Luciola mingrelicaтаких конструкций не описано. Гибридный белок: люцифераза Luciola mingrelica – биотин-связывающий домен. Получение, свойства, применение • 2. Плазмида для экспрессии гибридного белка • Для получения плазмиды, кодирующей гибридный белок , были использованы три фрагмента ДНК: • экспрессионный вектор pET23b, кодирующий дополнительную шестигистидиновуюпосле-довательность ; • ген термостабильного мутанта люциферазы 4TS, выделенный из плазмиды методом рестрикции; • фрагмент ДНК, кодирующий биотинсвязывающий домен (87 С-концевых аминоксилотных остатков bccp), выделенный из генома клеток E. coli и модифицированный сайтами рестрикции Sal I и Apa I при помощи ПЦР. • Полученные в результате лигирования клоны были проверены на содержание необходимых фрагментов с использованием метода PCR , рестрикционного анализа и секвенирования, которые подтвердили отсутствие мутаций в гене, кодирующем гибридный белок. Полученная плазмида была наработана в клетках E. coli XL1blue. • 3.Исследование свойств luc-bccp • Экспрессией белка в клетках E. coli BL21(DE3) получен и выделен с использованием метода метало-хелатной хроматографии гибридный белок (4TS-bccp), причем 60% гибридного белка находится в биотинилированной форме. Изучены каталитические свойства, термостабильность и спектры биолюминесценции гибридного белка и показано, что они близки к свойствам исходной люциферазы (Таблица 1). 4. Использование гибридного белка в качестве метки в ИФА для определения количества клеток Salmonella typhimurium В предварительно оптимизированных условиях был проведен гетерогенный сэндвич анализ для определения термически инактивированных клеток сальмонеллы (рис 2.). Иммобилизацию препарата инактивированных клеток проводили на активированный моноклональными небиотинилированными антителами полистирольный планшет. Рис. 4. Градуировочная зависимость биолюминес-центного сигнала от логарифма концентрации клетокSalmonella typhimurium в анализируемом образце, полученная с использованием схемы детекции, показанной на рис.2. Таблица 1 Физико-химические свойства мутанта 4TS люциферазы cветляков Luciola mingrelicaи гибридного белка: люцифераза (4TS)- биотин связывающий белок (bccp). Рис. 2. Схема образования детектируемого комплекса. • 4. Выводы • Сконструирована плазмида, кодирующая гибридный белок «люцифераза» -«биотин-связывающий домен» (4TS-bccp87)с использованием гена термостабильного мутанта 4TS люциферазы светляков Luciola mingrelica. • Проведена наработка, выделение и очистка гибридного белка luc-bccp87. Показано, что степень биотинилирования гибридного белка составляет 60%. • Показано, что присоединение биотин-связывающего домена не оказывает cущественного влияния на константы Михаэлиса, термостабильность и спектры биолюминесценции люциферазы светляков L. mingrelica. • Оптимизированы условия получения комплекса гибридный белок-стрептавидин для проведения иммуноферментного анализа. Показано, что стрептавидин и используемые антитела не оказывают влияния на биолюминесцентную активность гибридного белка. • Показана возможность детекции инактивированных клеток Salmonella typhimurium с использованиеммоноклональныхантител и комплексагибридныйбелок-стрептавидин в интервале 104-107 КОЕ/мл. • Ссылки • Chapman-Smith A., Cronan J. E. // JournalofNutrition. 1999. 129. P. 477-484. • KarpM., Oker-Blom C.// BiomolecularEngineering. 1999. 16. P. 101-104. • Wang C.-Y., SamHitz, Andrade J. D., Stewart R. J. // Anal. Biochem. 1997. 246. P. 133-139. • 4. Ohkuma H., Abeb K., Kosakab Y., Maedaa M. // AnalyticaChimicaActa. 1999. 395. P. 265-272 • 5. Tatsumi H., Fukuda S., Kikuchi M., Koyama Y. // Anal. Biochem. 1996. 243. P. 176-180. • Дополнительная информация • e-mail: mkoksharov@enz.chem.msu.r • Работа выполнена при поддержке • РФФИ (проект № 08-04-00624а).

More Related