1 / 31

BAKT RIUMOK TENY SZT SE

A nvekedst befolysol tnyezok. TpanyagokSznforrs (CH, AS sznlnca), nitrognforrs (pepton, ammnia) !! nvekedsi faktorok, vitaminok, nyomelemekHomrskletpszichrofil (<20C) mezofil termofil (>50 Thermus aquaticus)pHacidofil (Lactobacillus) alkalofil (Vibrio cholerae), legtbb

bud
Download Presentation

BAKT RIUMOK TENY SZT SE

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


    1. BAKTÉRIUMOK TENYÉSZTÉSE

    2. A növekedést befolyásoló tényezok Tápanyagok Szénforrás (CH, AS szénlánca), nitrogénforrás (pepton, ammónia) !! növekedési faktorok, vitaminok, nyomelemek Homérséklet pszichrofil (<20°C)– mezofil – termofil (>50 Thermus aquaticus) pH acidofil (Lactobacillus) – alkalofil (Vibrio cholerae), legtöbb 7,2-7,6

    3. Oxigénigény Obligát aerob (csak O2 jelenlétében M. tuberculosis) / fakultatív anaerob / obligát anaerob (Clostridiumok, toxikus az O2,) CO2 atmoszféra mértéke légköri = 0.03% Mikroaerofil (alacsony O2, magas CO2, C. jejuni ), aerotoleráns (02 jelenlétében is fermentál S.pyogenes) Toxikus oxigénformák közömbösítésének képessége: Szuperoxid diszmutáz (2 O2- + 2 H+ ? H2O2 + O2) Kataláz (2 H2O2 ? 2 H2O + O2)

    4. Táplálkozási típusok - I Autotróf szervetlenbol szervest építenek fel ehhez energiaforrás: fény (fotoautotrófok) oxidáció (kemoautotrófok) pl. szulfid ? szulfát, nitrit ? nitrát kórtani jelentoségük nincs

    5. Táplálkozási típusok - II Heterotróf szerves tápanyagot igényelnek C-forrás: glükóz, tejsav, keményíto, … N-forrás: aminosavak, … majdnem az összes patogén ide tartozik Paratróf csak élo sejtekben tudnak szaporodni pl. lepra kórokozója (egértalpban), rickettsiák

    6. Energianyerés típusai Légzés (aerobok!) van kataláz és szuperoxid-diszmutáz enzim szénhidrát anyagcsere: glükóz ? piroszolosav ? citrátkör ? légzési lánc ? sok ATP + CO2 + H2O terminális elektron-akceptor = O2 Fermentáció (anaerobok!) nincs enzim a káros oxidációs termékek semlegesítésére glükóz ? etanol + tejsav ? kevés ATP + CO2 + H2

    7. Baktériumok növekedési görbéje

    8. Táptalajok - I Halmazállapot szerint folyékony (húslé, buillon) szilárd (lemez, magas, ferde agar, Koch találta ki) Petri csésze! Eloállítás szerint természetes (epe, tej, húslé, ...) mesterséges Funkció szerint „normál” szelektív (pl antibiotikummal gátlódik ami nem érdekel minket) differenciáló ( biokém tul alapján elkülöníthetoek a hasonló baktériumok) dúsító

    9. Táptalajok - II Bouillon

    10. Táptalajok - III Egyszeru lemez agar

    11. Telepmorfológiai jellemzok telep nagysága telep fénye (tükrözodo, opál, áttetszo) telep alak (ép szélu, csipkézett, köldökös , kerek, platószeru) telep állaga (sima, száraz, gumiszeru, elfolyós) telep színe (pigment termelés) hemolízis: ? és ? tenyészet szaga (hársfa, fokhagyma)

    12. Hogy ezeket lássuk, IZOLÁLT TELEPEK-re van szükségünk: Telepmorfológiai jellemzok

    13. Mintatenyészetek - I Escherichia coli agar táptalajon semmi különös jellemzo, átlagos telepek

    14. Mintatenyészetek - II Bacillus cereus agar táptalajon erosen nyálkás, csipkézett szélu, felho-szeru („medúzafo-szeru”) tenyészet, ritka az izolált telep

    15. Mintatenyészetek - III Proteus mirabilis agar táptalajon rajzás !

    16. Mintatenyészetek - IV Intracelluláris pigmenttermelés Staphylococcus aureus arany pigment Staphylococcus epidermidis fehér pigment

    17. Mintatenyészetek - V Extracelluláris pigmenttermelés Pseudomonas auruginosa többféle pigment, extracellulárisan ?? az egész táptalaj elszínezodik a zöld pigment dominál táptalajon

    19. Mintatenyészetek - VI - hemolízis ?-hemolízis: Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes, Bacillus cereus teljes feltisztulás

    20. Anaerob tenyésztés I - Fizikai módszerek O2 kiforralása O2 kiszívása (vákuum – anaerosztát) Szúrt tenyészet magas agaron (karácsonyfa)

    21. Anaerob tenyésztés II - Kémiai módszerek 1. Redoxpotenciál csökkentése Holman médium (apróra darált húsdarabkák) tioglikolátos médium indikátor jelzi az átlevegosödést lezárás paraffin gyuruvel

    22. Anaerob tenyésztés II - Kémiai módszerek 2. Preis módszer erosen O2-igényes reakció játszódik le a tenyésztési térben GasPak: a tenyészetek behelyezése után a felszakított zacskókban levo reagensek reagálni tudnak egymással, elvonva az oxigént (CO2 fejlesztés)

    23. Anaerob tenyésztés III - Biológiai módszer Fortner eljárás elavult!! A két részre osztott Petri csésze egyik térfelén erosen aerob baktériumot (pl. Serratia) tenyésztünk, ami elvonja az összes oxigént

    24. Hemokultúra - I Vér vagy más steril minta tenyésztésére Milyen esetben alkalmazzuk: meningitis, endocarditis, bacteraemia, szisztémás fertozés gyanúja, peritonitis, FUO (=ismeretlen eredetu láz), mesterséges lélegeztetés során kialakuló fertozés, kórokozó váltás terápia alatt, implantáció utáni láz, … Inkubációs ido: 7-10 nap de: 80-90%-ban már az elso 24 óra alatt pozitív lesz!

    25. Hemokultúra - II Fontos szabályok Legalább két minta kell: kül. helyekrol, kül. idoben ! Frissen szúrt vénából !! legjobb a láz kezdetén elegendo mennyiséget kell levenni (2-30 ml) Sterilitás!! Antibiotikum kezelés alatt: ab-köto gyöngyökkel Aerob / anaerob palackpár

    26. Hemokultúra - III

    27. Transzport médiumok - I Transzport közeg példa: Stuart médium a baktériumok maximum 48 óráig túlélnek, de nem szaporodnak 0,2%-os agar Tárolás szobahon! anaerobok is túlélnek

    28. Transzport médiumok - II Transzport táptalajok A baktériumok szaporodnak is benne, mire a laborba érnek Példák: Uriline, Uricult, Gonoline, stb. Muanyag lemez két oldalán két vagy három különbözo táptalaj (szelektívek is)

    29. Biofilm - I Jelentosége vízben élo mikroorganizmusok 99,9%-a biofilmként él a felszíneken élo szervezetben: felületek kolonizációja (natív és beültetett) Kialakulása elokészíto réteg (slime képzés): elektrolitok (Ca2+, Mg2+), fehérjék, stb. baktériumok letapadása, konzorcium létrehozása biofilm leszakadása (disszemináció) planktonikus

    30. Biofilm - II Kimutatása elektronmikroszkóppal üvegcso falán, festéssel Antibiotikum rezisztencia nagyobb penetráció gátolt szaporodás lassúbb géntranszfer sokkal intenzívebb (+leszakadáskor elviszik!)

    31. Antibiotikum rezisztencia: biofilm versus planktonikus fázis

    32. Biofilm - III Kórképek biofilmmel: natív szívbillentyu endocarditis (Streptococcus, S. aureus, Enterococcus , Candida, Aspergillus) beültetett eszközök: érpálya kanülök (pl. centrális vénás, perifériás), húgyúti katéterek (Enterococcus, Gram -, Pseudomonas, Serratia, Citrobacter), mubillentyu, intrauterin eszközök, fogászati implantátumok (titánium), kontakt lencse, beültetett szemlencse, csípoprotézis, térdprotézis, … krónikus bakteriális prostatitis CF (cisztikus fibrózis): Pseudomonas aeruginosa, S. aureus, Burkholderia, H. influenzae (alginát képzés!) periodontitis, fog plaque

More Related