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原代细胞培养实验 --- 小鼠胚胎成纤维细胞培养. 指导教师:费晓方. 2014 年 6 月. 实验目的和要求:. 掌握 无菌操作技术。 掌握 组织细胞的消化与分散。 熟悉 原代细胞培养的一般方法与步骤。 熟悉 小鼠解剖操作技术。. 动物的选择:. 选择大约一半足孕时间的胚胎, 10 - 13 天龄胚胎含有最大数量的未分化的间质细胞,胚胎成纤维细胞可从这些细胞衍生获得。 每组小鼠胚胎 2-5 个. 实验材料:. 每组的超净台中有以下物品:
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原代细胞培养实验---小鼠胚胎成纤维细胞培养 指导教师:费晓方 2014年6月
实验目的和要求: • 掌握无菌操作技术。 • 掌握组织细胞的消化与分散。 • 熟悉原代细胞培养的一般方法与步骤。 • 熟悉小鼠解剖操作技术。
动物的选择: 选择大约一半足孕时间的胚胎,10-13天龄胚胎含有最大数量的未分化的间质细胞,胚胎成纤维细胞可从这些细胞衍生获得。 每组小鼠胚胎2-5个
实验材料: • 每组的超净台中有以下物品: • 1. 50ml 配制好的RPMI1640(或DMEM)培养液1瓶;8ml小牛血清(FCS) 1瓶;100ml 0.25%胰蛋白酶 1瓶;PBS(-)(生理型磷酸盐缓冲液)1 瓶 • 2. 100ml灭菌烧杯2个; • 3、50ml离心筒2个 • 4、灭菌培养皿1个,细胞培养瓶1个 • 4、1ml ,200μl移液器各1支;枪头盒2个;无菌玻璃搅拌棒1个 • 5、细胞计数板1块; • 6、灭好菌的镊子1把,剪刀1把; • 7、酒精灯1台;
试验操作步骤: 1)胚胎的分离。适用哺乳动物(仓鼠、小鼠和大鼠) a.采用认可的方案处死啮齿动物。 b.立即在无菌超净台内用70%乙醇擦洗整个动物。 c.用无菌的镊子和剪子在前腿下作一腹部水平切口,用无菌镊子将皮肤扯向后腿。 d.用另一无菌的剪刀和镊子切开腹部,取出含有胚胎的子宫,置于无菌的培养皿上。 e.剔除胚胎周围的包膜,将胚胎放于无菌的含有无菌PBS(-)的100ml烧杯中。 f.漂洗胚胎,去掉PBS(-)。继续用PBS(-)漂洗胚胎直至清洗液清亮为止。
试验操作步骤: 2)将2-5个胚胎转移至一个小的无菌培养皿中,用新的无菌剪刀小心地绞碎胚胎, 用PBS漂洗。 3)在无菌状态下,将绞碎的胚胎转移于一50ml 的无菌离心筒中, 加入40ml 0.25%的无菌胰蛋白酶,用搅拌棒轻轻搅动 。 4)在温暖的环境中或置于37 °C培养箱中轻轻摇动15分钟。 5)让存留的组织块在重力作用下慢慢沉降,将含有悬浮细胞的液体转移至一无菌50ml的离心管中,该管内按照每10ml上清加入l ml小牛血清的比例加入牛血清以灭活,胰蛋白酶。 6)加人新鲜胰蛋白酶溶液(见前述步骤)于含有残留未消化组织块的原来的50ml离心筒中,重复步骤4和5。
试验操作步骤: 7)离心混合的细胞悬液,1200r/rain,5分钟,弃上清。 8)用新鲜的无菌PBS重悬沉淀的细胞,按步骤7再次离心。 9)用PBS反复洗涤细胞直至上清清亮为止。 10)用含有10%牛血清和抗生素(如青霉素、链霉素)的DMEM(GIBCO/BRL)lOml再悬沉淀,并使终体积为20ml。 11)让残留的大块未破碎的组织或特殊颗粒物质沉降。可采用数层无菌纱布过滤细胞悬液以去除任何残留的细胞块。
试验操作步骤: 12)为确定现有细胞浓度,加入0.2ml细胞悬液于 1.8ml 1%醋酸溶液中以裂解红细胞, 用血细胞计数器进行细胞计数。 13)按每细胞瓶I x 106细胞的数量接种于10ml组织 培养液中,在饱和湿度的37°C C02培养箱中孵育直 至细胞铺满。 14)隔天进行细胞观察。