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Sto parlando di Naegleria fowleri, unu2019ameba normalmente a vita libera dal diametro massimo di circa 30-32 um che in determinate condizioni puu00f2 parassitare i mammiferi (uomo compreso).<br><br>Essendo unu2019ameba la si ritrova in ambienti acquatici e generalmente caldi (dai 42 ai 45u00b0C), dove normalmente vive come trofozoite (Fig.1a): la forma che si nutre di batteri, si muove tramite pseudopodi (detti lobopodi) e si riproduce.
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Método directo Es la observación directa del parasito en cualquiera de sus formas o en alguna de sus estructuras. En muestras de heces,sangre,orina,aspirado duodenal, raspado de lesió,lavado bronquial, flujo vaginal o uretra y aspirado de la lesión Método cualitativo Método cuantitativo
Análisis macroscópico • Heces mucosas. • Heces con rojo oscuro o heces con rojo claro • Heces espumosas
Diagnóstico Directo Solución salina y Yodo-Lugol
Se usa para la búsqueda e identificación de formas parasitariascomo quistes, huevos y helmintos.• Se evalúa una gran porción de la muestra.• Sensibilidad alta.• Fácil rápida y económica.• Metodo Cualitativo Método de concentración de Willis • Método de Willis Molloy o de solución saturada de NaCl: Útil para detectar quistes de protozoarios y huevos de helmintos.
Método de concentración de Faust • Por Flotación • Los elementos parasitarios se recogen de la superficie de un líquido denso al cual ascienden por su menor peso específico(sulfato de zinc al 33%). Los elementos parasitarios se recogen de la superficie de un líquido denso al cual ascienden por su menor peso específico
Método de concentración de Ritchie • SEDIMENTACIÓN /CENTRIFUGACIÓN • Se destaca el método de Ritchie(con formol y éter o acetato de etilo), que es el más usado en los laboratorios . Método de RITCHIE o de sedimentación por centrifugación ligera o por gravedad del material fecal, conduciendo a la recuperación de todos los protozoarios, huevos y larvas, especialmente huevos de trematodos
Método de concentración de Baerman • Método de BAERMANN : Método de concentración por migración. Muestras seriadas aumenta sensibilidad. Objetivo: recuperación de larvas rabditiformes de StrongyloidesSp
Test de Graham • El Test de Graham es una prueba para diagnosticar la oxiuriasis, o infección por oxiuros (Enterobiusvermicularis), que consiste en tomar una muestra de la región perianal con cinta adhesiva para luego observar al microscopio la presencia de los huevos del parásito
método de Kato-Katz • Método cualitativo: Técnica de Kato o método de concentración por tamizado (huevos de helmintos y algunos protozoarios). • Método cuantitativo de KATO KATZ (Análisis cuantitativo= hpg (cuantifica la presencia de huevos de helmintos por gramos)
Coloración Coloraciones temporarias • Lugol, Tionina, Azul de metileno Coloraciones permanentes (Frotis) • Ziehl Neelsen modificado o Kinyoun para diagnóstico de coccidiosis intestinales (Criptosporidiosis, Isosporosis, Ciclosporosis) • Hematoxilina Férrica para amebiasis • Tricrómica y Gram Cromotrope para microsporidiosis
Métodos indirectos • No se visualiza el parasito se cuantifica la reacción del huésped ante la presencia del parasito. Se piden en la etapa crónica de la enfermedad Western Blot Elisa IFI
Serología - Elisa https://www.frontiersin.org/journals/parasitology/articles/10.3389/fpara.2023.1138375/full
