CURSO AVALIAÇÃO DA CONFORMIDADE DE MATERIAL BIOLÓGICO
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M TODOS R PIDOS DE AN LISE DE MATERIAL BIOL GICO: BAX E RIBOPRINTER - PowerPoint PPT Presentation


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CURSO AVALIAÇÃO DA CONFORMIDADE DE MATERIAL BIOLÓGICO. MÉTODOS RÁPIDOS DE ANÁLISE DE MATERIAL BIOLÓGICO: BAX E RIBOPRINTER. LIDIANE BOTELHO [email protected]  IMPORTÂNCIA DAS ANÁLISES (QUAIS, QUANTOS, CONDIÇÕES HIGIÊNICAS, RISCOS, VIDA ÚTIL);

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CURSO AVALIAÇÃO DA CONFORMIDADE DE MATERIAL BIOLÓGICO

MÉTODOS RÁPIDOS DE ANÁLISE DE MATERIAL BIOLÓGICO: BAX E RIBOPRINTER

LIDIANE BOTELHO

[email protected]


IMPORTÂNCIA DAS ANÁLISES (QUAIS, QUANTOS, CONDIÇÕES HIGIÊNICAS, RISCOS, VIDA ÚTIL);

 DETERMINAÇÃO DO AGENTE ETIOLÓGICO (TOXINFECÇÕES)

PADRÕES E ESPECIFICAÇÕES ADEQUADOS

 ANÁLISES PODEM INVESTIGAR - PRESENÇA OU AUSÊNCIA, QUANTIFICAR, IDENTIFICAR E CARACTERIZAR AS DIFERENTES ESPÉCIES.



MÉTODOS CLÁSSICOS (CONVENCIONAIS)

  • Desenvolvidos a muito tempo;

  • Empregados como métodos oficiais;

  • Métodos estão descritos em publicações consideradas de referência, internacionalmente aceitas.

MÉTODOS RÁPIDOS

  • Abreviar o tempo necessário para a obtenção dos resultados;

  • Melhorar a produtividade laboratorial;

  • Simplificação do trabalho;

  • Redução de custos;

  • Maior sensibilidade e especificidade que os métodos convencionais.


  • PRINCIPAIS MÉTODOS CONVENCIONAIS E SUAS DESVANTAGENS:

  • CONTAGEM POR PLAQUEAMENTO:

  • É A MAIS UTILIZADA PORÉM É MUITO TRABALHOSA QUANDO MUITAS DILUIÇÕES PRECISAM SER ANALISADAS OU QUANDO O NÚMERO DE AMOSTRAS É GRANDE. LEITURA TAMBÉM PODE SER DIFÍCIL, CANSATIVA E IMPRECISA.

  • - NÚMERO MAIS PROVÁVEL:

  • ESTIMAR A CONTAGEM DE ALGUNS MICRORGANISMOS COLIFORMES). MÉTODO BASTANTE ANTIGO MAS OS RESULTADOS SÃO IMPRECISOS, UMA VEZ QUE PERMITE APENAS UMA ESTIMATIVA DO NÚMERO PRESENTE.


OUTRAS DESVANTAGENS NOS MÉTODOS CONVENCIONAIS SÃO:

- SEMEADURAS EM MEIOS DE CULTURA PARA O ISOLAMENTO DE COLÔNIAS E TESTES COMPLEMENTARES PARA A IDENTIFICAÇÃO;

Pré-enriquecimento em caldo não seletivo (18 horas);

Enriquecimento em caldo seletivo (18 - 24 horas);

Plaqueamento seletivo diferencial (18h - 37ºC)

Confirmação


-ALGUNS MICRORGANISMOS SE APRESENTAM INJURIADOS (ETAPA DE PRÉ-ENRIQUECIMENTO);

-ENRIQUECIMENTO SELETIVO (ADICIONAL);

- MÉTODOS BASEADOS NO COMPORTAMENTO BIOQUÍMICO FRENTE A DIFERENTES SUBSTRATOS (REAÇÕES BIOQUÍMICAS);

Rampa alcalina (vermelha) e fundo ácido (amarelo)

com ou sem produção de H2S (escurecimento do ágar).

Fermentação da lactose



BAX AVALIADAS;


  • BAX SYSTEM AVALIADAS;

  • DETECÇÃO DE PATÓGENOS;

  • Salmonella sp

  • Listeria sp

  • Listeria monocytogenes

  • E. coli O157:H7;

  • Enterobacter sakazakii


  • CARACTERÍSTICAS AVALIADAS;

  • ANÁLISE DE PRESENÇA OU AUSÊNCIA;

  • UTILIZA A TÉCNICA PCR

  • (POLYMERASE CHAIN REACTION);

  • DETECÇÃO DO DNA BACTERIANO;

  • TOTALMENTE AUTOMATIZADO

  • (AMPLIFICAÇÃO, DETECÇÃO E INTERPRETAÇÃO);

  • ALTO VOLUME DE ANÁLISE (96 AMOSTRAS SIMULTÂNEAS PARA O TARGET DE ESCOLHA);

  • MUITO FÁCIL USO;

  • -OS REAGENTES ESTÃO EM TABLETES;

  • -3 ½ PARA O ENRIQUECIMENTO;

  • -DETECÇÃO: 1UFC/25g DO ALIMENTO;

  • -ALTA ESPECIFICIDADE.



ETAPAS EXTERNAS AVALIADAS;

1 – PREPARAÇÃO DO DNA


  • ASPECTOS QUE DEVEM SER OBSERVADOS: AVALIADAS;

  • - 1º

  • Salmonella:

  • Protocolo padrão (TSB, Água Peptonada, Caldo Lactosado) - interferência química

  • Regrow: BHI

  • E. coli:

  • Protocolo padrão

  • Exceção: Carnes – (não há a necessidade de fazer o regrow)

  • -L. monocytogenesou sp:

  • 1-Caldo LEB (24hs)

  • 2-Mops Bleb (24hs)

  • - 2º (Lise celular) – Gram +


ETAPAS INTERNAS AVALIADAS;

2 – AMPLIFICAÇÃO


3 – DETECÇÃO AVALIADAS;


RIBOPRINTER AVALIADAS;


CARACTERÍSTICAS AVALIADAS;

  • É UM LABORATÓRIO COMPLETO DE TAXONOMIA BACTERIANA (IDENTIFICAÇÃO E CARACTERIZAÇÃO);

  • RNA BACTERIANO;

  • -FINGERPRINTING;

  • COMPLETAMENTE AUTOMATIZADO;

  • CAPACIDADE SIMULTÂNEA DE ANÁLISE PARA 8 BACTÉRIAS;

  • COMPARTILHAMENTO DE DADOS;

  • 8 HORAS PARA OBTENÇÃO DOS RESULTADOS;

  • É O ÚNICO EQUIPAMENTO DO GÊNERO QUE IDENTIFICA E CARACTERIZA;

  • O KIT VEM COM TODOS OS REAGENTES NECESSÁRIOS PARA REALIZAR 42 ANÁLISES;


RIBOTIPAGEM AVALIADAS;


  • -Grimont & Grimont 1986; AVALIADAS;

  • Baseia-se no fato de que os genes associados com o RNAr estão distribuídos ao longo de todo o cromossomo bacteriano, podendo produzir diferentes padrões de bandeamento (polimorfismo) quando o cromossomo é clivado com enzimas de restrição e hibridização com uma sonda de RNAr.

  • Variação de RFLP (Restriction Fragment Lenght Polymorfism) onde a sonda utilizada para detectar o polimorfismo é específica para RNAr.


  • A seqüência de RNAr pode ser selecionada de modo a se utilizar uma sonda específica para aquela espécie bacteriana da análise. Entretanto, algumas seqüências de RNAr estão conservadas em diferentes gêneros bacterianos. Assim, é possível, por ex. realizar a ribotipagem de amostras de S. aureus com uma sonda de RNAr isolada de E. coli.

  • -Princípio avaliar o polimorfismo do DNA na região onde está localizado o operon rrn; Composto pelos genes 16S e 23S, que codificam o rRNA das bactérias;


-Estes genes são altamente conservados nas espécies bacterianas o que permite o estudo de diferenciação das espécies bacterianas;

-rRNA 80% / 2.000 cópias / vida média até 100h;

--No DNA os genes responsáveis pela transcrição dessas moléculas são organizados em uma única unidade de transcrição;



PASSOS DA TÉCNICA DE RIBOTIPAGEM NO RIBOPRINTER separando cada gene, há seqüências de nucleotídeos chamadas de regiões espaçadoras ITS (Internal transcribed spacer) – variam muito (valor caracterização intragenérica)

- ETAPA EXTERNA


1 – ISOLAMENTO DO DNA CROMOSSÔMICO; separando cada gene, há seqüências de nucleotídeos chamadas de regiões espaçadoras ITS (Internal transcribed spacer) – variam muito (valor caracterização intragenérica)

HOMOGENIZAR

30L

DUAS DILUIÇÕES

40L TAMPÃO


  • INATIVAR AS NUCLEASES E LISE separando cada gene, há seqüências de nucleotídeos chamadas de regiões espaçadoras ITS (Internal transcribed spacer) – variam muito (valor caracterização intragenérica)

  • CICLOS DE AQUECIMENTO E RESFRIAMENTO

-5 L REAGENTES DE LISE A E B – RUPTURA DA MEMBRANA DAS CÉLULAS

-INTRODUZIR AS AMOSTRAS NO RIBOPRINTER

30L COLOCAR NO CARREGADOR DE AMOSTRAS


ETAPA INTERNA separando cada gene, há seqüências de nucleotídeos chamadas de regiões espaçadoras ITS (Internal transcribed spacer) – variam muito (valor caracterização intragenérica)


  • 2 – DIGESTÃO COM ENZIMA (S) DE RESTRIÇÃO; separando cada gene, há seqüências de nucleotídeos chamadas de regiões espaçadoras ITS (Internal transcribed spacer) – variam muito (valor caracterização intragenérica)

  • 3 – PFGE (PULSED FIELD GEL ELETROPHORESIS);

  • Separação: corrida em gel de eletroforese e separação dos fragmentos pelo peso molecular

  • 4 – SOUTHERN BLOT HIBRIDIZATION

  • Transferência: dos fragmentos imobilizados na membrana de nitrocelulose


  • Processamento da membrana: os fragmentos do DNA serão expostos a um tratamento químico-enzimático com uma sonda de DNA e um marcador quimioluminescente que revelará os fragmentos hibridizados.

  • 5 – REVELAÇÃO

  • - As imagens das membranas são capturadas pela máquina fotográfica, inserida no sistema e transferidas eletronicamente para o computador.


SOUTHERN BLOT HIBRIDIZATION expostos a um tratamento químico-enzimático com uma sonda de DNA e um marcador quimioluminescente que revelará os fragmentos hibridizados.

-A transferência dos fragmentos obtidos pela ação das enzimas de restrição do gel para uma membrana (nylon ou nitrocelulose), onde são fixados na mesma posição, formando uma cópia exata do arranjo original.

-Após a fixação a membrana é colocada em contanto com uma sonda de rRNA marcada, para que haja hibridização da sonda com as seqüências complementares presentes nos fragmentos oriundos do rDNA.


  • No computador a imagem de cada gel é tratada e comparada com o banco de dados para a identificação;

  • Cinco marcadores de peso moleculares são distribuídos no gel, permitindo que cada coluna, representando os dados da amostra, seja normalizada de acordo com um marcador padrão, baseado na posição e intensidade das bandas;

  • Coeficientes de similaridades são então calculados pelo sistema (posição e peso relativo das bandas);


RESULTADOS com o banco de dados para a identificação;

  • Todos os isolados que apresentam coeficientes de similaridades iguais ou maiores que 0,93% (93%) são classificados com o mesmo ribogrupo, e os que apresentam coeficientes de similaridades igual ou menores que 0,92% (92%) são isolados diferentes com padrões distintos.


RIBOPRINTER NOS PERMITE: com o banco de dados para a identificação;

- IDENTIFICAR AS REGIÕES DE VARIAÇÃO ENTRE AS ESPÉCIES

  • IDENTIFICAÇÃO DE ESPÉCIES E DISCRIMINAÇÃO DE SUB-ESPÉCIES;

  • TESTES DE ROTINA DE PRODUTOS ACABADOS, MATÉRIA-PRIMA, EQUIPAMENTOS, MEIOS E PESSOAS ETC.

  • DESVANTAGEM PRINCIPAL:

  • ALTO CUSTO DOS KITS;

  • DISPONIBILIDADE DO EQUIPAMENTO NO BRASIL;


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