1 / 20

Génterápia

Génterápia. A páciens sejtjeinek genetikai módosításán alapuló terápia. - klasszikus: a célsejtekbe juttatjuk a gént és expressziót idézünk elô: így pótoljuk a hiányzó aktivitást, <--- szelektíven megöljük a target sejtet, mozgósítjuk az immun-rendszert.

mickey
Download Presentation

Génterápia

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. Génterápia A páciens sejtjeinek genetikai módosításán alapuló terápia. - klasszikus: a célsejtekbe juttatjuk a gént és expressziót idézünk elô: így pótoljuk a hiányzó aktivitást, <--- szelektíven megöljük a target sejtet, mozgósítjuk az immun-rendszert. - nem-klasszikus: az adott gén expressziójának gátlása, a mutáció “kijavítása“ Csak szomatikus génterápia végezhetô!

  2. - klasszikus: a célsejtekbe juttatjuk a gént és expressziót idézünk elô: így pótoljuk a hiányzó aktivitást, <--- szelektíven megöljük a target sejtet, mozgósítjuk az immun-rendszert.

  3. - klasszikus: a célsejtekbe juttatjuk a gént és expressziót idézünk elô: így pótoljuk a hiányzó aktivitást, szelektíven megöljük a target sejtet, mozgósítjuk az immun-rendszert.

  4. - nem-klasszikus: az adott gén expressziójának gátlása, a mutáció “kijavítása“

  5. Génterápia - klasszikus: a célsejtekbe juttatjuk a megfelelô gént és így pótoljuk a hiányzó aktivitást: - in vivo gén-transzfer, - ex vivo gén-transzfer.

  6. A géntranszfer módszerei: hordozók

  7. Vektor-statisztika

  8. Génbevitel liposzóma segítségével

  9. Barátunk a retrovirus

  10. Barátunk a retrovirus

  11. ADA/génterápia Ashanti de Silva: az elsô páciens, aki génterápiás kezelésben részesült (1990-ben). Adenosin dezamináz-hiány (ADA) a T-sejtek mûködési zavarát idézi elô -> immunhiány. Ex vivo génterápiával a T-lifocitákat ADA cDNS-t tartalmazó retrovirussal fertôzték, majd a páciensbe visszajuttatták. Párhuzamosan enzim-szubsztituciós terápiát is alkalmaztak.

  12. Science 288; 669-671 (2000)

  13. (SCID)-X1 Kvantitativ PCR (A) és RT-PCR (B): genomba való inszerció és expresszió

  14. (SCID)-X1 Limfociták a génterápia után

  15. (SCID)-X1 A gc fehérje sejtfelszíni expressziója proliferációs képesség

  16. Barátunk a retrovirus? 2002 ôszén az egyik génterápiával kezelt SCID(X1) gyereknél a leukémia egy új formáját diagnosztizálták. LAM-PCR* technika segítségével meghatározták, hogy a retrovirus konstrukció az LMO-2 génbe inszertálódott, amely egy LMO-2 nevû, ismeretlen funkciójú fehérjét kódolja: inszerciós mutagenezis. Kiderült, hogy a gyerek valamennyi T-sejtje az LMO-2 fehérjét expresszálja magas szinten. Az is kiderült, hogy a családban már kétszer fordult elô gyermekkori leukémia. Eddig 1755 pácienst kezeltek retovirussal. Ez az elsô transzformáció. A SCID(X1) gyógyítására ma nincs konvencionális terápia. *Perceken belül megismerkedünk ezzel a technikával.

  17. Polyclonal long-term repopulating stem cell clones in a primate model Manfred Schmidt, Philipp Zickler, Gesa Hoffmann, Sebastian Haas, Manuela Wissler, Arne Muessig, John F. Tisdale, Ken Kuramoto, Robert G. Andrews, Tong Wu, Hans-Peter Kiem, Cynthia E. Dunbar, and Christof von Kalle Outline of linear amplification-mediated (LAM)-PCR. A new combination of linear amplification of target DNA with solid-phase second-strand synthesis, followed by ligation of an oligonucleotide cassette and then nested exponential PCR, was devised for the detection and direct genomic sequencing of unknown retroviral vector integration sites. (A) Linear PCR with a long terminal repeat (LTR)-specific biotinylated primer was performed by repeated primer extension. Subsequently, the amplified fragments of target DNA were enriched by magnetic tag selection of extension primers. (B) A second DNA strand of each enriched target sequence was synthesized by random hexanucleotide priming. (C) Resulting double-stranded DNA was specifically digested with the restriction enzyme Sse9I, which cuts within genomic DNA approximately every 256 bp. The length of each fragment is thus dependent on the distance of the vector insertion site from the next Sse9I recognition sequence. (D) An asymmetric oligonucleotide ligation cassette (LC) was ligated to the end of the Sse9I-digested fragments. (E) Nested exponential PCR amplifications were then performed with LC- specific forward primers (LC 1 followed by LC 2) and LTR-specific reverse primers (LTR II followed by LTR III).

More Related