1 / 42

Формирование осей и спецификация осевых зачатков в раннем развитии у рыб, птиц и млекопитающих

Лекция 9 Раннее развитие позвоночных СТАНОВЛЕНИЕ ОБЩЕГО ПЛАНА СТРОЕНИ е В РАННЕМ РАЗВИТИИ ПОЗВОНОЧНЫХ ЖИВОТНЫХ проф. А. П. Перевозчиков. Формирование осей и спецификация осевых зачатков в раннем развитии у рыб, птиц и млекопитающих.

maj
Download Presentation

Формирование осей и спецификация осевых зачатков в раннем развитии у рыб, птиц и млекопитающих

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. Лекция 9Раннее развитие позвоночныхСТАНОВЛЕНИЕ ОБЩЕГО ПЛАНА СТРОЕНИе В РАННЕМ РАЗВИТИИ ПОЗВОНОЧНЫХ ЖИВОТНЫХ проф. А. П. Перевозчиков

  2. Формирование осей и спецификация осевых зачатков в раннем развитии у рыб, птиц и млекопитающих

  3. Danio rerio (на фото мутант -мозаик по окраске). Зародыши Danio rerio являются удобными объектами биологии развития позвоночных, поскольку они прозрачны, быстро развиваются, у них легко получать серии мутаций ( И. Мизгирев).

  4. Прижизненная экспрессия гена зелёного флуоресцирующего белка -gfp, под контролем промотора гена сердечного актина Xenopus в трансгенной рыбке Danio rerio (24 часа развития). Зародыш располагается на желточном мешке (изначально – в желточной клетке) ( И. Мизгирев).

  5. Дискоидальное дробление яйца костистой рыбки (Danio rerio). A-оплодотворённая яйцеклетка (накопление цитоплазме в районе бластодиска), B- 2-х, C- 4-х, D- 8-и, E- 32-х, F-64-х клеточные стадии зародышей. Первые 12 делений идут синхронно через интервалы в 15 мин. Бластомеры на этих стадиях имеют цитоплазматические мостики и контакты с расположенной ниже большой желточной клеткой

  6. Поздняя бластула (подготовка кмиграции клеток в гаструле). EVL-одноклеточный слой клеток - перидерм. Микротрубочки определяют направление миграции ядер желточного синцитиального слоя (перибласта) и эпиболию желтка клетками бластодермы. Начиная, примерно, с 10 дробления происходит переход на средней бластуле - транскрибируются зиготические гены, замедляются клеточные деления и далее происходят асинхронно. Справа - поздняя бластула карповых рыб. Внизу - карта судьбы клеток глубинного слоя бластодермы.

  7. Гаструляция у рыб. Формирование зародышевого щитка на границе с желточным синцитиальным слоем. Образование гипобласта путём инволюции клеток от маргинальной зоны зародышевого щитка и ингрессии клеток эпибласта внутрь.

  8. Гаструляция у Danio rerio (продолжение). Зародышевый щиток определяет дорсальную сторону, противоположная сторона - вентральная. Из гипобласта (мезэнтодерма) формируется энтодерма и мезодерма. Слева -90% обрастания желточной клетки эпидермальными клетками. Справа - завершение гаструляции (10, 3 часа с момента начала развития).

  9. Миграции клеток (схематически) в ходе гаструляции Danio rerio. Образование хордомезодермы (ХМ) путём расширяющегося уплотнения клеток гипобласта (мезэнтодермы) от зародышевого щитка к анимальному (будущему переднему) полюсу. На вегетативном полюсе располагается задний конец зародыша. Образование параксиальной мезодермы(ПМ) и обособление ХМ и ПМ от энтодермы.

  10. Демонстрация (методом гибридизации in situ) образования хорды (вверху -маркёрный ген хорды - no tail/Brachyury) и параксиальной мезодермы (внизу - маркёрный ген - snail) при гаструляции zebrafish

  11. Зародышевый щиток рыб играет роль организатора. Пересадка зародышевого щитка в раннюю гаструлу другого зародыша приводит к образованию второго комплекса осевых зачатков (внизу справа), связанного с одной желточной клеткой. иРНК sonic hedgehog локализована вентрально вдоль зародышей

  12. Желточный синцитиальный слой, контактирующий с зародышевым щитком, по-видимому, играет роль центра Ньюкупа. Сравнение локализацииb - катенина в ядрах желточного синцитиального слоя бластулы zebrafish (слева) и дорсальной стороны бластулы Xenopus (справа).

  13. Активность бета-катенина в Центре Ньюкупа зародыше Danio.Squint – аналог Nodal-подобного белка, bozozok- аналог ТФ siamois

  14. Образование комплекса осевых зачатков вдоль передне-задней и дорсо-вентральной осей в раннем развитии рыб. Существование двух сигнальных центров для установления передне-задней полярности

  15. Сравнение развития ранних стадий зародышей лягушки и курицы

  16. Формирование осей и спецификация осевых зачатков в развитии птиц. Дискоидальное меробластическое дробление яйца курицы.

  17. Образование двуслойной бластодермы куриного зародыша. Area pellucida - одноклеточный слой клеток -- формирует большую часть зародыша. Area opaca - периферийный слой клеток, располагающийся на желтке. Образование гипобласта (ГБ) деламинацией (первичный ГБ –аналог ПВЭ млекопитающих) и миграцией из маргинальной зоны (серпа Коллера)- (вторичный гипобласт, или эндобласт). Гипобласт и эндобласт дают начало стенкам экстраэмбриональным тканям (например, желточного мешка и др.). Передне-задняя полярность зародыша задана постериорной маргинальной зоной.

  18. Миграции клеток в районе первичной полоски куриного зародыша

  19. Миграции энтодермальных и мезодермальных клеток через первичную полоску. Вверху - электронная микрофотография -клетки эпибласта проходят в бластоцель (бутылковидные клетки). Внизу - схема гаструляции: направление миграции клеток путём конвергентного удлинения. Образование хорды таким путём приводит к уплотнению клеточного тяжа.Происходит замещение клеток гипобласта (ГБ) и эндобласта выселяющимися энтодермальными клетками, с вытеснением клеток ГБ на периферию для образования желточного мешка.

  20. Значение pH в формировании дорсо-вентральной оси и роль гравитации в формировании передне-задней оси куриного зародыша. pH 9,5 - альбумина и pH6,5 субгерминальной полости (СП) инициирует поток ионов Na внутрь СП и создает положительный потенциал +25 mV на будущей вентральной стороне эпибласта. Вращение оплодотворенного яйца в яйцеводе после оплодотворения (в области железы, формирующей скорлупу) 20 час (10--12 об/час) приводит к оформлению постериорного (P) и антериорного (A)районов бластодермы

  21. Образование Центра Ньюкупа у зародышей лягушки и курицы

  22. Образование гензеновского узелка из серпа Коллера. Расположение клеток в области серпа Коллера определяет распределение структур вдоль передне-задней оси, образованных с участием гензеновского узелка (аналога организатора амфибий).

  23. Образование второго комплекса осевых зачатков после трансплантации в эпибласт куриного зародыша гензеновского узелка (Организатора Шпемана). Продукция клетками узелка -Chordin, Noggin, Nodal-related - белков. Роль FGF узелка и первичной полоски в индукции заднего мозга и туловищных нейрональных структур

  24. Схема установления лево-правой асимметрии в курином зародыше. Роль белка Sonic hedgehog (Shh) в организаторе, а также Caronte, Nodal и Lefty-2 в мезодерме боковой пластинки в лево-правой активации факторов транскрипции Pitx2 и Snail

  25. Передача сигнала о лево-правой асимметрии из узелка Гензена, активирующего экспрессию генов caronte, nodal и pitx2 в мезодерму боковой пластинки

  26. Эктопическая экспрессия shh в гензеновском узелке ведёт к симметричной экспрессии nodal в мезодерме (in vivo к нарушениям закладки сердца)

  27. Развитие зародыша человека от оплодотворения до имплантации в стенку матки

  28. Особенности дробления яиц млекопитающихДробление яйца у амфибии (слева) и млекопитающего (справа). Ротация плоскости дробления второго бластомера

  29. Компактизация мышиного зародыша на стадии 8-и бластомеров. Роль щелевых контактов. Первичная дифферецировка в ходе образования бластоцисты (клетки внутренней массы и клетки внешнего слоя - будущего трофобласта).

  30. «Вылупление» бластоцисты мыши из желточной оболочки (zonapellucida)и имплантация в стенку матки

  31. Формирование клеточных пластов в ходе развития зародыша человека между 7 и 11 сутками. Имплантация зародыша в матку. Образование эпибласта и гипобласта, амниона и трофобласта

  32. Формирование тканей зародыща человека между 7 и 11 сутками развития

  33. Диаграмма, представляющая образование различных тканей зародыша и внезародышевых оболочек из различных участков бластоцисты млекопитающих

  34. Дорсо-вентральная ось связана с эмбриональной-абэмбриональной осью, которая формируется под прямым углом по отношению к анимально-вегетативной оси яйца млекопитающего

  35. Миграции клеток в ходе гаструляции зародыша человека. Формированиие первичной полоски, узелка и миграция клеток через первичную бороздку и узелок внутрь между эпибластом и гипобластом. Особенности гаструляции у млекопитающих. Роль кадгеринов в эпителиально-мезенхимных превращениях происходящих в ходе ингрессии и дальнейшей миграции клеток.

  36. Становление передне-задней оси: Два сигнальных центра формирования зачатков зародыша вдоль оси в ходе гаструляции: передняя висцеральная энтодерма (ПВЭ - AVE),экспрессирует гены Dickkopf, Otx2, Hex, Lhx1, cerberus-like, Lefty1 –головной отдел зародыша, и Узелок - аналог Гензеновского узелка птиц

  37. Движения в ходе развития зародышей позвоночныхБолее поздние стадии развития млекопитающих (мышь) – поворот зародыша (стадии 13 -14) приводит к его окончательной позиции и дальнейшему развитию в виде плода (fetus)

  38. Формирование передне-задней оси (продолжение).Передняя часть зародыша определяется внезародышевой передней висцеральной энтодермой (ПВЭ -AVE), задняя (постериорная) – внезародышевой эктодермой (трофоэктодермой)

  39. Передняя часть зародыша определяется внезародышевой антериорной висцеральной энтодермой (ПВЭ-AVE), задняя (постериорная) – внезародышевой эктодермой (трофоэктодермой).(продолжение схемы, расположенной на предыдущем слайде)

  40. Слева - объемное изображение 5,5-суточного зародыша мыши (конфокальноая микроскопия). Клетки ПВЭ продуцируют зелёный флуоресцирующий белок –GFP. Ядра клеток окрашены DAPI (голубой цвет), актиновые микрофиламенты окрашены pahlloidin в красный цвет (according to Srinivas S. et al., 2004).Справа – схема движения клеток ПВЭ на тех же сроках развитияв яйцевом цилиндре.

  41. Предполагаемый путь формирования лево-правой асимметрии у мыши (за счёт экспрессии генов Узелка). Реснички клеток узелка обеспечивают ток жидкости слева направо. В результате этого активизируется FGF8 (далее он активирует Nodal, Lefty2 и Pitx2).Начало цепочки контролируется геном iv. В случае мутации этого гена закладка сердца и других органов происходит хаотично. Продуктом гена iv является моторный белок ресничек - dynein

  42. Экспрессия гена Nodal в мезодерме боковой пластинки (в норме слева) A, B -зародыш мыши на стадии 5 сомитов. Справа - C- экспрессия Nodal симметричная у мыши с мутацией гена iv. В этом случае петлеобразное формирование сердца (из сердечной трубки) может быть нарушено.

More Related