ESTRATEGIA DE PROPAGACIÓN
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ESTRATEGIA DE PROPAGACIÓN in vitro DE Aechmea fasciata PARA LA REGENERACIÓN DE PLANTAS COMPLETAS. Previa a la obtención de Grado Académico o Título de:. INGENIERA EN BIOTECNOLOGÍA. R. Valeria Vallejo T. Directora: M. Sc. Mónica Jadán Codirector: Ing. Pedro Romero.

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Previa a la obtenci n de grado acad mico o t tulo de

ESTRATEGIA DE PROPAGACIÓN in vitro DE Aechmea fasciata PARA LA REGENERACIÓN DE PLANTAS COMPLETAS.

Previa a la obtención de Grado Académico o Título de:

INGENIERA EN BIOTECNOLOGÍA

R. Valeria Vallejo T.

Directora: M. Sc.Mónica Jadán

Codirector: Ing. Pedro Romero


Introducci n

Plantas monocotiledóneas originarias del continente americano.

Introducción

BROMELIAS

Incluye 56 géneros, 3.143 especies y subespecies, más de la mitad son epífitas.

Proveen de un sitio para vivir a insectos, ácaros, crustáceos, moluscos e incluso pequeños anfibios.

  • En Ecuador, la única cultivada es la piña, con aproximadamente 600 Ha.

  • Tillandsiadyerianase encuentra en los manglares

  • Llamadas también huaicundos


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Formulación del problema

Justificación

  • Tala indiscriminada de bosques.

  • Pérdida de especies endémicas.

  • Crecimiento lento

  • Propagación in vitro:

  • Mayor número de plantas en menor tiempo.

  • Plantaciones uniformes.

  • Plantas sin microorganismos.

  • Interés económico


Objetivos

Objetivos

  • General

  • Establecer una estrategia de propagación in vitro de Aechmea fasciata para la regeneración de plantas completas.

  • Específicos

  • Determinar el protocolo de desinfección más adecuado para la introducción de explantes de Aechmea fasciata.

  • Establecer la dosis óptima de reguladores de crecimiento en la fase de introducción que permita la adaptación de los explantes.

  • Determinar la dosis óptima de BAP, corte del explante y consistencia del medio en la fase de multiplicación que permitan obtener el mayor número de brotes.

  • Estudiar el efecto de dos auxinas en la fase de enraizamiento, que permitan la obtención del mayor número de plantas enraizadas.

  • Determinar la estrategia más económica para la regeneración de Aechmea fasciata in vitro.


Marco te rico

  • 140 especies distribuidas desde México hacia Sudamérica.

  • Se presenta como roseta de largas hojas, márgenes aserrados, inflorescencia en espiga.

  • Planta ornamental.

  • Las hojas están cubiertas de tricomas.

Marco teórico

Aechmea fasciata

  • Morfologías:

  • Plantas terrestres (Ananas, Pitcairnia)

  • Plantas epifitas con reserva de agua (Neoregelia, Aechmea)

  • Plantas epifitas sin tanque (Tillansiarecurvata, T. circinata)

  • En Ecuador existen 447 especies, incluyendo 152 especies endémicas, agrupadas en 13 géneros (Manzanares 2000, Valencia & León Yánez 2002).

  • Muestran gran adaptabilidad y resistencia a condiciones ambientales extremas (Miranda et al. 2007).

  • El ciclo de vida abarca de 2 a 30 años.


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Cultivo in vitro de tejidos vegetales

  • Cultivar plantas dentro de un frasco de vidrio en un ambiente artificial.

  • Características fundamentales: la asepsia y el control de los factores que afectan el crecimiento.

Medio de cultivo

1. Macroelementos y microelementos  C,H,P,K,S,Ca,Mg – B,Zn,Mn,Fe,Cl

2. Reguladores de crecimiento.

- Auxinas  Agrandamiento y alargamiento celular, formación de raíces laterales y adventicias, retardo en la abscisión de hojas y frutos, entre otros efectos.

- Citoquinas  El proceso de división celular, la diferenciación en tejidos vegetales, la modificación de la dominancia apical y diferenciación de tallos.

3. Agentes gelatinizadores  Agarosa y agaropectina.

4. Fuente de carbono Sacarosa

5. Vitaminas  Tiamina, piridoxina, ác. nicotínico, mioinositol

6. Factores físicos  Temperatura, luz, pH


Propagaci n in vitro de aechmea fasciata

Propagación in vitro de Aechmea fasciata


Materiales y m todos

Materiales y métodos

La investigación se realizó en los Laboratorios de Servicios Agrobiotecnológicos “AGROBIOTECH”, ubicados en la Provincia de Pichincha, Cantón Rumiñahui.

El material vegetal utilizado fueron hijuelos de Aechmea fasciata proporcionado en el laboratorio.


Fase de desinfecci n

Fase de desinfección

Metodología:

Tratamientos aplicados para la desinfección de explantes.

Variables a evaluar:

Explantes sumergidos en ácido cítrico hasta su siembra.

Explantes listos para la desinfección en cámara.

Explantes que serán introducidos en el medio de cultivo.

Explantes sembrados.

  • Contaminación (fúngica y bacteriana)

  • Fenolización

  • Mortalidad


Fase de introducci n

Fase de introducción

Metodología:

Tratamientos aplicados para la fase de introducción de explantes.

Variables a evaluar:

  • Adaptabilidad.

  • Contaminación (fúngica y bacteriana).

  • Longitud del explante.

  • Brote de A. fasciata a los empezando la fase.

  • Brote de A. fasciata a los 20 días de la fase.

  • Brote de A. fasciata lista para la siguiente fase.


Fase de multiplicaci n

Fase de multiplicación

Tratamientos aplicados para la fase de multiplicación de explantes.

Variables a evaluar:

  • Explante listo para ser cortado.

  • Explantes con corte longitudinal.

  • Explante sembrado en medio semisólido.

  • Explantes sembrados en medio líquido.

  • Explantes multiplicados.

  • Presencia de brotes

  • Longitud del explante

  • Contaminación


Fase de enraizamiento

Fase de enraizamiento

Tratamientos aplicados para la fase de enraizamiento de explantes.

Variables a evaluar:

  • Longitud de la raíz.

  • Altura del explante.

  • Color del explante.

  • Explante con nuevos brotes.

  • Brotes separados del explante principal.

  • Explantes sembrados en el medio de enraizamiento.

  • Explantes sembrados en los 9 tratamientos.

  • Explantes con raíces.


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RESULTADOS Y DISCUSIÓN


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Etapa de Desinfección: Contaminación del explante

Figura 1. Gráfico de porcentaje de contaminación utilizando los 6 tratamientos de NaClO.

T5: 1% NaCl – 3min

T6: 1% NaCl – 5min

Figura 2. Gráfica de frecuencias de explantes no contaminados respecto a la concentración de hipoclorito de sodio.

Figura 3. Gráfica de frecuencias de explantes no contaminados

respecto al tiempo de inmersión


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Análisis estadístico

Tabla 1. Prueba de Friedman para la variable contaminación.

Tabla 2. Prueba de Kruskal-Wallis para la variable contaminación (28 días).


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Etapa de Desinfección - Fenolización

Figura 4.Gráfico de porcentaje de fenolización después de la aplicación de los

tratamientos de NaClO.

T2: 0,5% NaCl – 5min

T3: 0,75% NaCl – 3min

T5: 1% NaCl – 3min

T6: 1% NaCl – 5min

Al realizar las pruebas estadísticas no se

encontró diferencia significativa p = 53%


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Etapa de Desinfección - Mortalidad

Figura 5. Gráfica de frecuencias de explantes vivos respecto a la concentración de hipoclorito de sodio y tiempo de inmersión.


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Etapa de Establecimiento - Adaptabilidad

Figura 6. Gráfica de frecuencias de explantes adaptados según los tratamientos utilizados.

Al realizar las pruebas estadísticas no se

encontró diferencia significativa p = 64%


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Etapa de Establecimiento – Longitud del Explante

Figura 7. Gráfica de frecuencias del promedio de longitudes de los explantes de Aechmea fasciata.

T5: 0,1ppm ANA – 0 ppm AIA –

0 ppm AIB

Tabla 3. Promedio de longitudes de los explantes a partir de los tratamientos utilizados.


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Análisis estadístico

Tabla 4. ADEVA para la longitud (cm)

promedio de los explantes de

Aechmea fasciata.

p = 1,9%

Figura 9. Gráfica de perfil de la concentración de ANA y la concentración de AIB.

Figura 8. Gráfica de perfil de la concentración de ANA y la concentración de AIA.


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Etapa de multiplicación – Número de brotes

Figura 10. Gráfico de cajas mostrando las medias del número de brotes respecto a los 12 tratamientos.

T7: : 0ppm BAP – corte longitudinal, apical –

medio líquido

Al realizar las pruebas estadísticas no se

encontró diferencia significativa p = 70%

Tabla 5. Número de brotes según el tratamiento.


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Etapa de multiplicación – longitud de brotes

Figura 11. Gráfico de cajas mostrando las medias de la longitud de explantes respecto a los 12 tratamientos.

T7: 0ppm BAP – corte longitudinal, apical –

medio líquido

Tabla 6. Variación de longitud de brotes en centímetros


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Etapa de multiplicación – longitud de brotes

Análisis estadístico

Tabla 7. Prueba LSD de Fisher para la interacción de BAP, tipo de corte y consistencia del medio, respecto a la longitud del explante.


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Etapa de enraizamiento – Longitud de la raíz

Figura 12. Gráfico de cajas mostrando la variación de longitud de las raíces respecto a los tratamientos

T6: 1ppm AIB – 0,5ppm AIA

T8: 0,5ppm AIB – 1ppm AIA

Tabla 8. Variación de la longitud de la raíz en centímetros


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Etapa de enraizamiento – Longitud de la raíz

Análisis estadístico

Tabla 9. Prueba LSD de Fisher para el análisis de la interacción entre las hormonas AIA y AIB.

Figura 14. Gráfica de perfil de la concentración de AIA y la concentración de AIB.


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Etapa de enraizamiento – Longitud del explante

Figura 13. Gráfico de cajas mostrando la longitud del explante respecto a los 9 tratamientos utilizados.

T8: 0,5ppm AIB – 1ppm AIA

Tabla 10. Variación de longitud de explantes en centímetros


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Etapa de enraizamiento – Longitud del explante

Tabla 11. Prueba LSD de Fisher para el análisis de la interacción entre AIA y AIB para la longitud del explante.

Figura 15. Gráfica de perfil de la concentración de AIA y la concentración de AIB.


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Etapa de enraizamiento – Color del explante

Escala colorimétrica establecida enpor Lindsey y Brown 2006


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Tabla 13.Determinación del costo de suministros de producción de Aechmea fasciata.

Tabla 12.Determinación del costo de los materiales de laboratorio para la micropropagación de Aechmea fasciata.

Determinación de la estrategia más económica para la regeneración de plantas de Aechmea fasciata.

Tabla 14. Determinación de los costos fijos

del proyecto.


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Determinación de costos directos por cada tratamiento en las 4 fases.

Fase de desinfección

Fase de introducción


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Fase de multiplicación

Fase de enraizamiento


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Determinación de costos directos por cada fase.

Determinación del costo total de la producción de Aechmea fasciata in vitro.


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CONCLUSIONES


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  • Una concentración de 1% de hipoclorito de sodio por un tiempo de cinco minutos de inmersión permite obtener explantes viables y libres de contaminación en el proceso de desinfección de Aechmea fasciata; es necesaria la aplicación de un antioxidante en el medio de cultivo para ayudar a que el explante no elimine fenoles de manera inmediata y pueda empezar a adaptarse al medio.

  • Los explantes adaptados al medio de cultivo empiezan a cambiar su color, de blanco a verde conforme avance su desarrollo.

  • La longitud del explante permitió establecer estadísticamente el mejor tratamiento de introducción debido a la diferencia significativa obtenida, donde el tratamiento adecuado fue T5 (0,1mgL-1 de ANA, 0mgL-1 de AIA y 0mgL-1 de AIB) alcanzando la mayor longitud.

  • El mayor número de brotes en la fase de multiplicación estuvo favorecido por el tratamiento que contenía el medio con sales M&S, suplementado con 0mgL-1 de la hormona BAP.


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  • La longitud del explante y el crecimiento de brotes presentan un mejor desarrollo en un medio M&S sin la adición de agar.

  • Las concentraciones de 0,5 y 1mgL de AIA y AIB son las que favorecieron en un mayor tamaño tanto en la longitud de la raíz como en la longitud del tamaño del explante durante la fase de enraizamiento.

  • El color de los explantes se mantuvo en el mismo tono verde, indicando el avance de su desarrollo.

  • El uso de carbón activado provee un ambiente de oscuridad al medio de cultivo, aumentado en gran manera la generación de raíces.

  • El método de multiplicación para Aechmea fasciata presenta un costo para el mercado de 0,76 centavos de dólar.


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RECOMENDACIONES


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  • Es importante realizar ensayos previos para encontrar el tratamiento adecuado para la desinfección de las bromelias, sin olvidar que se debe eliminar toda la humedad que puede tener la planta.

  • Se debe tener mucho cuidado en el manejo de los explantes para no contaminarlos, así como se debe esterilizar bien los materiales, es importante cambiar las pinzas cada vez que se realice el trabajo en cámara.

  • Es necesario para un buen desarrollo del explante mantener controladas las condiciones ambientales a las que se encuentra la planta, ya un exceso de humedad o rayos solares puede dañar el explante.

  • Con el fin de disminuir el coeficiente de variación, se debería homogenizar el material vegetal, para que los explantes de A. fasciata que serán utilizados estén en igual condiciones.

  • Se recomienda realizar ensayos adicionales para la conservación de este material vegetal, ya que es una especie que se encuentra en peligro de extinción.


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GRACIAS!


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