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Presentation Transcript


    1. Validation d’une unité de production en réacteur Mario Jolicoeur, ing., Ph.D. Professeur Département de génie chimique

    3. Problématique particulière Chimie de synthèse Formation de produits secondaires, intermédiaires Isoformes Nombre élevé de réactions/étapes successives Utilisation de produits dangereux (e.g. phosgène) Étapes successives de concentration/purification

    4. Problématique particulière Biotechnologie Catalyseur Cellule ou microorganisme en culture pure Conditions de culture: température, pH, pO2, pCO2, etc. Contaminants: Les cellules hôtes: perte de rendements et pathogénécité de résidus Contamination: pathogénécité (pyrogènes), immunogénicité Mutations Accumulation du produit Formation de produits secondaires, intermédiaires Isoformes et différence de bioactivité: Protéines: patron de glycosylation ADN: mutations Cellules: différenciation/dédifférenciation/phénotype Nombre élevé de réactions simultanées et en réseau Utilisation de milieux de culture nutritifs complexes Définit vs non-définit (sérums, extraits de levures, etc.) Étapes successives de concentration/purification

    5. Objectifs de la validation Assurer la reproductibilité du procédé de production Qualité et Quantité du produit Faciliter les étapes finales de purification Diminution des coûts et reproductibilité de la qualité Connaître les limites d’opération Temps de réponse et diagnostiques de la performance Connaître le cycle d’entretien Prolonger la durée de vie des équipements Assurer la conformité aux normes

    6. Définition et portée Performance: en plus de la capacité, inclue les critères de performance des équipements; contrôle la qualité et la propreté du produit et des divers contenants Fonctionnalité: en plus du fonctionnement de base, on entend les attributs clefs fonctionnels telle que la capacité à maintenir le fonctionnement à l’intérieur des plages critiques d’opération Construction: neutralité, durabilité, nettoyabilité et stérilisabilité des matériaux de construction des équipements entrant en contact avec le produit Instrumentation: les outils permettant de suivre le déroulement d’un procédé et d’en évaluer le caractère critique

    7. Cadre du procédé Qualité de l’air: classification des salles où sont installés les équipements; de l’air entrant en contact avec le produit ou des surfaces entrant en contact avec le produit Dessins: plans de l’ensemble des salles incluant l’écoulement des marchandises et des personnes Services: les besoins instantanés et à long terme

    8. Étapes d’un procédé Préparation des réactifs : peut s’agir de nutriments ou d’agents de formulation; peser (classe 100 000); parfois stérilement (classe 100); requiert nettoyage (e.g. endotoxines) et stérilisation des réservoirs et contenants divers Mélange des réactifs: eau USP ou WFI, classes 100 000 (manipulation non-stérile) à 100 (stérile) Filtration stérile: idem ci-haut Préparation des réservoirs: idem ci-haut Préparation des lignes de transfert: idem ci-haut Production: classe 100 000 sauf classe 100 si ouvert à l’air libre Préparation des équipements de récolte: idem ci-haut Préparation des équipements de purification : idem ci-haut Lyophilisation: idem ci-haut Mise en vials: idem ci-haut

    9. Cycle de vie : le cadre de la validation

    16. Description du bioprocédé

    17. Cadre du plan maître de validation

    19. Composantes critiques TOUTES! maintien de la stérilité, pureté et intégrité du produit maintien de l’aseptie et de l’intégrité des équipements de production, de séparation et de purification

    20. Activités de validation 1. Spécifications de design des équipements 2. Les réactifs et cellules utilisées 3. La préparation des équipements nettoyage, passivation, stérilisation 4. La préparation des réactifs et des cellules 5. Le procédé de production échantillonnage, conditions contrôlées, récolte 6. Purification

    21. Utilités critiques Air de la pièce classifiée Eau Froide Eau USP et/ou WFI Électricité Réseau informatique Drain vers Réservoirs de décontamination Vapeur (grades usine et propre) Air comprimé et autres gaz

    22. …Utilités critiques Information requises pour chaque utilité Emploi Source Température Pression Diamètres des tuyaux Voltage Ampérage Validation/acceptation préalable ?

    23. 1. Spécifications de design Neutralité des surfaces, matériaux Surfaces nettoyables: facteur de rugosité, points morts Toutes les composantes supportent une stérilisation à la vapeur (121oC et 1 atm) Maintien de la stérilité Haute autonomie des composantes: stérilisation sectorielle Hydrodynamique, transfert de masse et cisaillement adéquats Capteurs adéquats : pO2, pH, To, P, N Actuateurs adéquats : pompes, vannes Système informatisé de collecte des données d’opération: lectures, points de consigne et actions ainsi que l’archivage etc.

    24. 2. Les réactifs et cellules utilisées Les réactifs certificats de conformité des fournisseurs contaminants biologiques et chimiques preuve de test sur la biocompatibilité « cell culture tested » Milieux définit préférables (sans sérums, extraits de levures, etc.) Les cellules Banque maîtresse de cellules congelées ou lyophilisées (homogénéité) documentation de la provenance : historique documentation sur les conditions et plages de cultures: pO2, pH, To, P, N, composition du milieu de culture

    25. 3. La préparation des équipements 1. Nettoyage description des équipements protocoles (procédure et tests) critères d’acceptation: # de particules/volume 2. Passivation (rendre la surface neutre) protocoles (procédure et tests) pour SS316 (0,25-1% NaOH, 60oC, 1h; rince; 0,25-1% acide citrique, 60oC, 1h) 3. Test d’étanchéité protocoles (procédure et tests): généralement par pressurisation de l’unité entière à 5-10 psi sur 4h avec de l ’air ou de l’He critères d’acceptation: 1-2 psi/h (fuite moléculaire)

    27. 3. La préparation des équipements Stérilisation protocoles (procédure): généralement par pressurisation de vapeur saturée à 1 atm et 121 oC sur 30 -60 min protocoles (tests): essais en utilisant le même milieu de culture ou un milieu enrichi et des spores de bactéries résistantes à la chaleur (thermophiles): Bacillus stearothermophillus critères d’acceptation: maintien de la pression et de la température sur la période visée atteinte de la réduction en microorganismes viables visée Nfinal = 10-3 organisme par cuve (à 10-6) N/No = e-kd*t où kd = kdo* e-Ea/T on assumera de perdre une cuvée sur 1000

    28. 3. La préparation des équipements Stérilisation

    29. 4. La préparation des réactifs et des cellules Réactifs protocoles de préparation: acceptation des tests internes: contaminants, biocompatibilité type de mélangeur, qualité de l’eau ajoutée, mode de stérilisation critères d’acceptation: aspect visuel, pH, précipités, etc. Cellules protocoles de mise en culture aseptique et de préparation de l’inoculum: décongélation/réhydratation, milieu de culture, mode d’expansion température, pH, etc. critères d’acceptation: taux de croissance, morphologie, taux et niveau de productivité, phénotype

    30. 4. La préparation des réactifs et des cellules Cellules critères d’acceptation: taux de croissance, morphologie, taux et niveau de productivité, phénotype (ci-bas: exemple de cellules végétales)

    31. 5. Le procédé de production Inoculation protocoles: mode de transport des cellules inter-bioréacteurs, ratio d’inoculation critères d’acceptation: taux de croissance, morphologie, taux et niveau de productivité, phénotype Échantillonnage des sous-cultures et de l’inoculum protocoles: critères d’acceptation: maintien de l’aseptie des sous-cultures, représentativité du bouillon de culture (ou suspension cellulaire)

    32. 5. Le procédé de production Inoculation protocoles: mode de transport des cellules inter- bioréacteurs, ratio d’inoculation

    33. 5. Le procédé de production : Conditions contrôlées pO2 protocoles: mélange des gaz alimentés, stérilisation (filtres), algorithme de commande (PI), actuateurs (contrôleurs de débits massiques, vannes, bombonnes) critères d’acceptation: maintien de la pO2 à ± 1% du point de consigne, temps de réponse < 20% du temps de réponse du système après perturbation, maintien de l’intégrité du produit et des cellules, impuretés (gaz, particules, vapeur d’eau) Procédure identique pour le pH (± 0,1), l’agitation (± 2 rpm), la température (± 1oC), le volume (± 1% de V), la pression (± 1 psi)

    34. 5. Le procédé de production Échantillonnage du bioréacteur protocoles: ordre des manipulations, volumes à prélever (rinçage des lignes et échantillon), fréquence adaptée à la dynamique cellulaire critères d’acceptation: maintien de l’aseptie du bioréacteur, représentativité du bouillon de culture Récolte protocoles: ordre des manipulations, automatisée ou manuelle critères d’acceptation: maintien de l’aseptie du bioréacteur, du bouillon et des composantes périphériques, maintien de l’intégrité du produit et des cellules, % de récupération en volume

    35. protocoles: ordre des manipulations, volumes à prélever (rinçage des lignes et échantillon), stérilisation critères d’acceptation: maintien de l’aseptie du bioréacteur, du bouillon et des composantes périphériques, maintien de l’intégrité du produit et des cellules, % de récupération du produit Généralement en salle classe 100 si le produit est exposé à l’air

    36. Chang A, Sofer G, Dusing S. Expediting compliance for clinical biotherapeutics. BioProcess International, Février 2004.

    37. Cadre du plan maître de validation

    38. Qualification du design FAT (factory acceptance test) et SAT (site acc. test) Description des besoins de l’utilisateur Liste exhaustive des composantes du système Liste des utilités requises Critères et plage d’acceptation Ensemble des dessins rédigés Clauses reliées à l’inspection du système installé Liste de la documentation critique exigée des fournisseurs

    39. Qualification du design Retour sur les Spécifications de design Neutralité des surfaces, matériaux Surfaces nettoyables: facteur de rugosité, points morts Toutes les composantes supportent une stérilisation à la vapeur (121oC et 1 atm) Maintien de la stérilité Haute autonomie des composantes: stérilisation sectorielle Hydrodynamique, transfert de masse et cisaillement adéquats Capteurs adéquats : pO2, pH, To, P, N Actuateurs adéquats : pompes, vannes Système informatisé de collecte des données d’opération: lectures, points de consigne et actions ainsi que l’archivage etc.

    40. Qualification de l’installation Vérification documentée attestant que les fournisseurs ont respecté les spécifications Vérification et documentation que l’installation respecte les spécifications des fournisseurs Vérification et documentation que les locaux et les services permettent l’installation tel que spécifié par le client et le(s) fournisseur(s) Le IQ est exécuté en révisant la documentation critique et en inspectant les composantes physiques du système

    41. Qualification de l’installation Retour sur les Spécifications de design Capteurs installés adéquatement : pO2, pH, To, P, N Actuateurs installés adéquatement : pompes, vannes, etc. Système informatisé de collecte des données et d’opération installés adéquatement

    42. Documents relatifs à l’IQ Description des systèmes Critères d’acceptation Liste des composantes majeures du système Liste des utilités requises Liste des instruments critiques Liste des dessins finaux (‘as-built’) à vérifier Liste des PON reliées au système Liste de contrôle pour l’inspection du système installé Renvoi de la documentation critique

    43. Qualification de l’opération Vérifier et documenter que l’unité de production fonctionne en accord avec les spécifications du manufacturier Vérifier et documenter que l’unité de production fonctionne en accord avec les spécifications liées à la culture de cellules Chacune des composantes Chacune des fonctionnalités Sections Majeures 1. Critères d’acceptation (±oC, ±oC, 2. Tests opérationnels

    44. Qualification de l’opération Retour sur les Spécifications de design L’opération ne nuit pas à la: Neutralité des surfaces et des matériaux La nettoyabilité des surfaces La résistance à une stérilisation à la vapeur (121oC et 1 atm) Au maintien de la stérilité L’hydrodynamique, le transfert de masse et le cisaillement spnt adéquats Les capteurs fonctionnent adéquatement : pO2, pH, To, P, N Les actuateurs fonctionnent adéquatement : pompes, vannes Le système informatisé de collecte des données et d’opération fonctionne adéquatement : Lectures Contrôle aux points de consigne pO2 (± 5%), pH (± 0,1), l’agitation (± 2 rpm), la température (± 1oC), le volume (± 1% de V), la pression (± 1 psi) Actions reproductibles Archivage etc.

    45. Qualification de la performance Vérifier et documenter que les DQ, IQ, OQ ont été réalisés La reproductibilité du procédé est démontrée: quantité et qualité Le PQ est exécuté en révisant la documentation critique décrite aux IQ et OQ

    46. Qualification de la performance La reproductibilité du procédé est démontrée: quantité et qualité

    47. Critère d’acceptation final Tous les tests doivent être complétés avec succès Le résultat attendu pour chaque test doit être indiqué dans le protocole

    48. Le procédé est validé soumission à la FDA/DGPS début de la production

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